总论 1
一、绪言 1
(一) 生理学实验课的目的 1
(二) 实验课的要求 1
(三) 整理实验结果 1
(四) 书写实验报告 1
(五) 生理学实验室规则 2
二、生理学常用刺激器材及使用方法 2
(一) 刺激器 2
(二) 刺激电极 4
(三) 锌铜弓 5
三、生理学常用记录器材及使用方法 5
(一) 双导生理记录仪 5
(二) 记纹鼓 9
(三) 支台 11
(四) 杠杆 11
(五) 描笔 12
(六) 墨水 12
(七) 肌动器 12
(八) 气鼓 12
(九) 检压计 13
(十) 电磁标 13
(十一) 记滴器 13
四、生理学实验常用手术器械的使用方法 14
五、生理学实验常用溶液及配制方法 16
(一) 常用盐溶液 16
(二) 常用动物麻醉药物剂量和使用方法 17
(三) 常用抗凝剂的配制 17
六、动物实验的基本操作技术 17
(一) 常用动物的捕捉方法 17
(二) 常用动物的麻醉方法 19
(三) 常用动物的固定方法 20
(四) 常用手术的基本操作 20
(五) 常用动物的给药方法 23
(六) 常用的采血方法 24
各论 27
实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备 27
实验二 阈刺激、阈上刺激、最大刺激 29
实验三 肌肉的单收缩、复合收缩和强直收缩 30
实验四 负荷对肌肉收缩的影响 32
实验五 神经干动作电位测定 34
实验六 神经兴奋传导速度的测定 36
实验七 神经纤维兴奋不应期的测定 37
实验八 肌电图描记 39
实验九 神经的强度-时间曲线和时值的测定 41
实验十 血细胞计数 42
实验十一 血细胞比容的测定 44
实验十二 血红蛋白量的测定 44
实验十三 红细胞渗透性试验 45
实验十四 红细胞沉降率试验 47
实验十五 血液凝固 47
实验十六 出血时测定 49
实验十七 凝血时测定 50
实验十八 血型测定 50
实验十九 蟾蜍心脏起搏点的分析 51
实验二十 期前收缩与代偿间歇 53
实验二十一 影响心脏活动的体液因素 54
实验二十二 心音听诊 56
实验二十三 人体动脉血压的测定 57
实验二十四 蛙心容积导体实验 58
实验二十五 心电向量测定 59
实验二十六 人体表心电图的描记 61
实验二十七 人体无创伤心功能测定 64
实验二十八 人体动脉脉搏描记 67
实验二十九 兔动脉血压的调节 68
实验三十 兔减压神经放电 70
实验三十一 蟾蜍在体心肌动作电位描记 71
实验三十二 蟾蜍舌的微循环观察 73
实验三十三 人体肺容量和肺通气量的测定 74
实验三十四 兔呼吸运动的调节与胸膜腔内压的观察 77
实验三十五 兔膈神经放电 81
实验三十六 消化道平滑肌生理特性 83
实验三十七 兔胃运动的观察 84
实验三十八 小白鼠能量代谢的测定 86
实验三十九 影响尿生成的因素 88
实验四十 动物肾上腺摘除后的观察 90
实验四十一 反射弧的分析 91
实验四十二 脊髓反射 92
实验四十三 破坏小脑动物的观察 94
实验四十四 兔大脑皮层运动区功能定位 95
实验四十五 去大脑僵直 96
实验四十六 人体脑电图的描记 97
实验四十七 大脑皮层诱发电位 98
实验四十八 人视觉功能测定 101
实验四十九 人体视网膜电图的描记 101
实验五十 视野测定 103
实验五十一 瞳孔的调节反射和对光反射 104
实验五十二 声音传导的途径 105
实验五十三 微音器效应 105
实验五十四 破坏动物一侧迷路的效应 107