第一部分 总论 3
第1章 绪论 3
1.1 动物生理学实验及其方法 3
1.1.1 离体实验方法 3
1.1.2 在体实验 3
1.2 动物生理学实验课的教学内容和目的 4
1.3 动物生理学实验课的要求 4
1.3.1 实验前 4
1.4 动物生理学实验报告的撰写 5
1.3.3 实验后 5
1.3.2 实验时 5
第2章 动物生理学实验常用仪器、设备 7
2.1 刺激系统 8
2.1.1 电子刺激器 8
2.1.2 刺激隔离器 10
2.1.3 电极 10
2.2 引导、换能系统 12
2.2.1 机械引导（传动）装置 12
2.2.2 换能器 14
2.3.1 生物放大器的基本要素 16
2.3 信号调节放大系统——生物电放大器 16
2.3.2 微电极放大器 17
2.4 显示、记录系统 18
2.4.1 二道生理记录仪 18
※2.4.2 SBR-1型二线示波器 21
2.5 计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用 22
2.5.1 计算机生物信号采集处理系统的基本组成和工作原理 22
2.5.2 计算机生物信号采集处理系统的基本操作 24
2.5.3 刺激器的设置 26
2.5.4 换能器定标 26
3.1.1 常用手术器械 28
第3章 动物生理学实验的基本操作技术 28
3.1 动物生理学实验常用手术器械 28
3.1.2 手术器械的消毒方法 30
3.2 实验动物、实验用动物及其选择 31
3.2.1 实验动物的种类和特性 32
3.2.2 实验动物的选择 33
3.3 实验动物的编号、捉拿、固定方法 34
3.3.1 动物编号方法 34
3.3.2 动物捉拿和固定方法 34
3.4 实验动物的给药方法 37
3.4.1 经口投药法 37
3.4.2 注射给药 38
3.5 动物的麻醉 41
3.5.1 麻醉前的准备工作 41
3.5.2 全身麻醉 41
3.5.3 局部麻醉 42
3.5.4 麻醉效果的观察 42
3.5.5 麻醉注意事项 43
3.6 实验动物的采（取）血与处死方法 43
3.6.1 实验动物的采（取）血方法 43
3.6.2 实验动物的处死方法 44
3.7.2 切口和止血 45
3.7.1 除去被毛 45
3.7 组织分离和插管术 45
3.7.3 肌肉、神经、血管的分离 46
3.7.4 插管术 47
3.8 动物实验意外事故的处理 50
3.8.1 麻醉过量和窒息 50
3.8.2 大出血 50
第4章 动物生理学研究性实验的程序与基本要求 51
4.1 动物生理学实验设计 51
4.1.1 立题 51
4.1.2 实验设计 52
4.2.2 预备实验 56
4.2 筛选与预备性实验 56
4.2.1 初步筛选 56
4.3 实验结果的观察、记录及其处理 57
4.3.1 实验及其结果的观察和记录 57
4.3.2 实验结果的处理 58
4.3.3 研究（实验）的结论 58
4.4 生理学实验研究论文的撰写 59
第二部分 各论 63
第5章 细胞的基本功能 63
实验5.1 坐骨神经－腓肠肌标本制备 63
实验5.2 刺激强度对肌肉收缩的影响 66
实验5.3 刺激频率对肌肉收缩的影响 69
实验5.4 心肌收缩的特点 72
实验5.5 神经干复合动作电位及其传导速度的测定 74
实验5.6 神经兴奋不应期的测定 78
实验5.7 强度－时间曲线的测定 79
实验5.8 蛙坐骨神经－腓肠肌标本中神经、肌肉兴奋时的电活动和肌肉收缩的综合观察 81
实验5.9 影响神经动作电位传导速度的因素（实验设计） 82
第6章 血液生理 84
实验6.1 红细胞比容的测定 84
实验6.2 血红蛋白的测定 85
实验6.3 红细胞沉降率的测定 89
实验6.4 红细胞脆性的测定 90
实验6.5 血细胞计数 91
实验6.6 出血时间的测定 95
实验6.7 凝血时间的测定 96
实验6.8 影响血液凝固的因素 97
实验6.9 ABO血型鉴定和交叉配血实验 99
实验6.10 实验设计 101
第7章 血液循环生理 102
实验7.1 蛙心起搏点观察 102
实验7.2 鱼类心脏的期前收缩与代偿间歇 103
实验7.3 心脏灌流 107
实验7.4 心音听诊 110
实验7.5 微循环观察 112
实验7.6 交感神经对血管和瞳孔的作用 114
实验7.7 蛙心电图和容积导体的导电规律 115
实验7.8 禽与哺乳动物的心电图描记 118
实验7.9 鱼类心电图的描记 121
实验7.10 心血管活动的神经体液调节 122
实验7.11 家兔的心电图和左心室内压的同步观察 128
实验7.12 影响心输出量的因素（实验设计） 130
实验8.1 大鼠离体肺静态顺应性的测定 134
第8章 呼吸生理 134
实验8.2 呼吸运动的调节 137
实验8.3 膈肌电活动的记录 140
实验8.4 呼吸运动、胸内负压及隔神经放电的同步观察 141
实验8.5 鱼类呼吸运动及重金属离子对鱼类洗涤频率的影响 145
第9章 消化生理 147
实验9.1 离体小肠平滑肌的生理特性 147
实验9.2 唾液分泌的观察 151
实验9.3 唾液、胰液和胆汁的分泌 153
实验9.5 在体小肠运动的记录 157
实验9.4 胃内容物的分层分布 157
实验9.6 胃肠运动的直接观察 160
实验9.7 家禽的食管切开术与假饲实验 163
实验9.8 大白鼠胃液分泌的调节 167
实验9.9 反刍动物咀嚼与瘤胃运动的描记 168
实验9.10 瘤胃内容物在显微镜下的观察 170
实验9.11 反刍的机制 171
实验9.12 小肠的吸收 173
实验9.13 外源性胆囊收缩素（cck）对动物摄食行为的调控（实验设计） 175
第10章 能量代谢与体温调节生理 177
实验10.1 小白鼠能量代谢的测定 177
实验10.2 温度对鱼类耗氧量的影响 181
实验10.3 动物体温的测定 184
实验10.4 甲状腺素对代谢的影响 186
第11章 泌尿与渗透压调节 188
实验11.1 影响尿生成的因素 188
实验11.2 肾小球血流的观察 191
实验11.3 鱼类渗透压调节 192
实验11.4 循环、呼吸、泌尿综合实验 193
第12章 神经与感觉生理 197
实验12.1 脊髓反射的基本特征和反射弧的分析 197
实验12.2 大脑皮层运动机能定位和去大脑僵直 200
实验12.3 去小脑动物的观察 203
实验12.4 肌梭传入冲动的观察 205
实验12.5 破坏动物—侧迷路的效应 207
第13章 生殖、内分泌生理 209
实验13.1 甲状腺对蝌蚪变态的影响 209
实验13.2 甲状旁腺切除与骨骼肌痉挛的关系 211
实验13.3 胰岛素、肾上腺素对血糖的影响 212
实验13.4 肾上腺摘除动物的观察 213
实验13.5 血中甲状腺素的放射免疫测定 215
实验13.6 促黄体生成素的放射受体测定 218
实验13.7 乳中孕酮的酶联免疫测定 221
实验13.8 啮齿动物动情周期的检查 225
实验13.9 雄激素对鸡冠发育的作用 226
实验13.10 精子的氧耗强度 227
实验13.11 精子活力的测定 228
实验13.12 激素对未成熟的雌性小鼠生殖器官的作用 229
实验13.13 金鱼的应激反应 230
实验13.14 鱼类的性外激素 232
实验13.15 鱼类的体色（实验设计） 233
实验13.16 乳羊的排乳反射 234
实验13.17 生长素促进动物生长作用的观察（实验设计） 235
附录1 常用生理溶液、试剂、药物的配制与使用 236
1．常用生理溶液的成分及配制方法 236
2．消毒液、洗液的配制 237
3．脱毛剂的配制 239
4．特殊试剂的保存方法 239
5．常用血液抗凝剂的配制及用法 240
6．几种实验动物常用麻醉药物的参考剂量 241
附录2 实验动物的生理指标 243
1．常用实验动物的一般生理常数参考值 243
2．常用实验动物血液学主要生理常数 243
3．常用实验动物白细胞分类计数参考值（％） 244
附录3 实验参数配置表 245
参考文献 247