第一章 绪论 1
一、动物生理学实验教学内容和目的 1
二、动物生理学的研究方法 1
三、动物生理学实验教学的整合及对学生综合能力的培养 2
第二章BL-420生物功能实验系统 7
一、系统概述 7
二、系统性能指标 7
三、原理 7
四、软件使用方法 9
五、注意事项 16
第三章 实验动物的基本知识 17
第一节 常用实验动物的种类及应用 17
一、蟾蜍和青蛙 17
二、家兔 17
三、小鼠 20
四、大鼠 22
五、猪 23
六、狗 24
七、猫 26
八、鸡 27
九、鸽 28
十、山羊 28
十一、绵羊 28
十二、马 29
十三、牛 29
第二节 实验动物的营养需要及饲养管理 29
一、动物所需营养素的种类及影响营养需要量的因素 30
二、常用实验动物的饲养标准和营养需要特点 30
三、实验动物饲料的分类及其营养价值的评定 32
四、实验动物饲养的辅助设施和设备 33
第三节 实验动物常用操作技术 34
一、动物实验中常用的手术方法 34
二、实验动物的急救 36
三、实验动物的护理 37
第四章 实验动物的选择方法 38
第一节 选择实验动物的基本原则 38
一、相似性原则 38
二、特殊性原则 39
三、可靠性原则 39
四、标准化原则 39
五、重复性原则 40
六、可控性原则 40
七、规格化原则 40
八、经济性原则 40
第二节 常见动物实验中实验动物的选择 41
一、实验动物的来源及其遗传背景 41
二、实验动物的种类 41
三、实验动物的品系 41
四、实验动物的性别 42
五、实验动物的年龄 42
六、实验动物的体重 42
七、实验动物的生理及健康状况 42
八、实验动物的等级 43
第三节 实验设计与技术操作对结果的影响及控制 43
第五章 动物生理学实验室的生物安全及对实验者的要求 45
第一节 动物生理学实验室的生物安全 45
一、病原体分级 45
二、生物安全等级 45
三、影响动物实验室的环境因素 45
第二节 动物生理学实验中对实验者的要求 47
一、实验动物的订购与运输 47
二、实验人员的保护 48
第六章 动物实验的基本技术方法 49
第一节 动物实验前的准备 49
一、样本与剂量 49
二、预实验与筛选 50
三、手术动物的准备 50
第二节 动物实验设计与分组 51
一、实验设计的基本原则 51
二、常用的实验设计方法 53
第三节 实验动物的抓取与固定 54
一、小鼠的抓取与固定 54
二、大鼠的抓取与固定 55
三、豚鼠的抓取与固定 55
四、兔的抓取与固定 56
五、犬的抓取与固定 56
六、猫的抓取与固定 57
七、蛙类的抓取与固定 57
第四节 常见实验动物性别鉴定与日龄判断 58
一、实验动物性别鉴定 58
二、实验动物日龄的判断 58
第五节 动物标记法及去毛法 59
一、动物标记法 59
二、动物去毛法 60
第六节 动物的麻醉方法 61
一、全身麻醉 61
二、局部麻醉 63
三、椎管内麻醉 65
四、动物麻醉深度的判定 65
第七节 动物给药途径与方法 65
一、注射给药 66
二、经口给药 67
三、吸入给药 68
四、气管注入法 68
第八节 动物血液采集方法 69
一、实验动物血液的采集 69
二、常用实验动物的采血部位及方法 70
第九节 动物各种体液的采集方法 73
一、尿液的采集 73
二、胆汁的采集 73
三、胰液的采集 74
四、淋巴液的采集 74
五、唾液的采集 74
六、阴道液的采集 74
七、精液的采集 74
八、乳汁的采集 75
九、实验动物粪便的采集 75
第十节 受试动物的临床检查方法 75
一、肝脏活检方法 75
二、淋巴结活检方法 75
三、骨组织活检方法 75
四、阴道组织活检方法 75
第十一节 动物的处死方法 76
一、大鼠和小鼠 76
二、犬、猫、兔、豚鼠 76
第七章 动物实验外科操作技术与常见手术方法 77
第一节 术前准备及术后处理 77
一、术前准备 77
二、术后处理 81
第二节 动物实验外科基本操作技术 82
一、组织分离 82
二、组织切开 83
三、止血 83
四、打结 84
五、缝合 86
六、拆线 87
第八章 细胞的基本功能 88
实验一 坐骨神经-腓肠肌标本的制备及生物电现象的观察 88
实验二 刺激与反应的关系 90
实验三 蛙坐骨神经干动作电位的观察 92
实验四 神经干兴奋不应期的测定 94
实验五 强度-时间曲线的测定 95
实验六 神经-肌肉接头兴奋的传递和阻滞 96
实验七 蛙坐骨神经-腓肠肌标本中神经、肌肉兴奋时的电活动、肌肉收缩以及不同因素对观察指标的影响（综合性实验） 98
实验八 骨骼肌终板电位的记录及药物的影响（综合性实验） 99
实验九 影响神经动作电位传导速度的因素（设计性实验） 100
第九章 血液生理 101
实验一 血细胞比容的测定 101
实验二 红细胞渗透脆性的测定 102
实验三 红细胞沉降率的测定 103
实验四 血细胞计数 104
实验五 血红蛋白含量的测定 107
实验六 出血时间和凝血时间的测定 108
实验七 影响血液凝固的因素 109
实验八ABO血型鉴定和交叉配血实验 111
第十章 血液循环生理 113
实验一 蛙心起搏点观察 113
实验二 蛙类微循环的显微观察 114
实验三 蛙心的期前收缩与代偿间歇 116
实验四 蛙心脏灌流实验观察 118
实验五 动脉血压的直接测定与影响因素 120
实验六 人体动脉血压的间接测定及运动对血压的影响 122
实验七 影响心排血量的因素及其实验观察（综合性实验） 124
第十一章 呼吸生理 127
实验一 家兔胸内压的测定和开放性气胸的观察 127
实验二 家兔呼吸运动的调节 128
实验三 隔肌电活动的记录 130
实验四 呼吸运动、胸内压及隔神经放电的同步观察（综合性实验） 132
第十二章 消化生理 135
实验一 离体小肠平滑肌的生理特性 135
实验二 唾液分泌的观察 137
实验三 胰液和胆汁的分泌 139
实验四 胃内容物的分层分布 141
实验五 猪胃液的分泌 142
实验六 胃肠道运动的直接观察 143
实验七 反刍动物咀嚼与瘤胃运动的描记 144
实验八 反刍活动观察 145
实验九 瘤胃内容物的观察 147
实验十 肠内容物渗透压对小肠物质吸收的影响 147
第十三章 能量代谢和体温调节 149
实验一 小白鼠能量代谢的测定 149
实验二 动物体温的测定 150
实验三 甲状腺激素对代谢的影响 151
第十四章 泌尿生理 153
实验一 影响尿生成的因素 153
实验二 循环、呼吸、泌尿功能的综合观察 155
第十五章 神经与感觉生理 158
实验一 脊髓反射的基本特征和反射弧的分析 158
实验二 大脑皮层运动功能定位和去大脑僵直 160
实验三 损伤小鼠一侧小脑对躯体运动的影响 163
实验四 破坏豚鼠一侧迷路的效应 164
实验五 小白鼠电防御条件反射的建立、分化与消退 164
实验六 家兔大脑皮层诱发电位 166
实验七 豚鼠耳蜗微音器电位的观察 167
实验八 毁蛙脑不同部位引起骨骼肌运动的观察 169
实验九 交互抑制 170
实验十 自主神经末梢递质释放的观察 171
第十六章 内分泌和生殖生理 173
实验一 摘除肾上腺对动物耐受力的影响 173
实验二 摘除甲状旁腺对动物机体的影响 174
实验三 胰岛素和肾上腺素对血糖水平的影响 176
实验四 摘除垂体对体内某些内分泌腺的影响 177
实验五 垂体激素对蛙卵巢的作用 178
实验六 甲状腺激素对蝌蚪发育的影响 179
实验七 甲状腺激素的放射免疫测定 180
实验八 小鼠发情周期的检查 182
实验九 雌激素对雌性小鼠生殖器官发育的影响 183
实验十雄激素对鸡冠发育的影响 183
实验十一 精子耗氧强度的测定 184
实验十二 精子活力的检查和畸形率测定 185
实验十三 蛙的受精方法及卵裂的观察 187
实验十四 大鼠离体子宫平滑肌运动的观察 188
实验十五 甲状腺对大鼠能量代谢率的影响及其分泌调节（综合性实验） 190
一、摘除甲状腺对大鼠能量代谢率的影响 190
二、垂体提取物对离体培养的甲状腺组织分泌甲状腺激素的影响 190
第十 七章 设计性实验 192
第一节 设计性实验的基本原则 192
一、科学性原则 192
二、简便性原则 192
三、可行性原则 192
四、单一变量原则 192
五、可重复性原则 192
六、对照性原则 193
第二节 实验设计的基本过程 193
一、设计性实验的基本思路 193
二、设计性实验的基本环节 193
三、设计性实验的基本程序 194
四、设计性实验的具体步骤 194
第三节 设计性实验举例 195
实验一 低温应激对小鼠不同组织脂质过氧化状态的影响 195
实验二 人参对游泳应激小鼠血清葡萄糖、尿素和肌酐含量的影响 196
实验三 川芎水煎液对离体蟾蜍心电图的影响 197
附录 198
附录一 常用生理溶液的配制 198
附录二 实验动物的一般常数 199
附录三 常用注射麻醉剂、消毒药品和洗涤液的参考剂量、配置及用途 200
附录四 常用血液抗凝剂的配制及其方法 201
附录五 动物给药量的确定及人与动物的用药量换算方法 202
参考文献 204