细胞生物学实验规则 1
第一篇 实验仪器 2
实验1普通光学显微镜的工作原理及使用 2
实验2倒置显微镜的工作原理及使用 7
实验3相差显微镜的工作原理及使用 9
实验4荧光显微镜的工作原理及使用 12
实验5激光扫描共聚焦显微镜的工作原理及使用 16
实验6流式细胞仪的工作原理及应用 20
实验7冷冻高速离心机的工作原理及使用 22
实验8透射电子显微镜的工作原理及使用 24
实验9扫描电子显微镜的工作原理及使用 26
实验10显微摄影技术 28
主要参考文献 30
第二篇 验证性实验 31
实验11动物细胞外部形态的扫描电子显微镜观察 31
实验12细胞活体染色及细胞器显微观察 33
实验13植物细胞超微结构观察 40
实验14细胞有丝分裂观察 43
实验15细胞膜的渗透性和细胞的凝聚反应 46
实验16细胞电泳 49
实验17小鼠巨噬细胞吞噬运动观察 52
主要参考文献 54
第三篇 综合大实验 55
实验18细胞器的分离 55
实验18-1动物细胞器的分离 55
实验18-2植物叶绿体的分离 57
实验19显微细胞化学技术 59
实验19-1细胞中DNA的显微定位（Feulgen reaction） 59
实验19-2细胞中RNA的显微定位 62
实验19-3过碘酸雪夫反应（PAS）定位细胞中多糖 64
实验19-4苏丹黑B染色定位细胞中脂类 66
实验19-5细胞中过氧化物酶的定位 69
实验19-6细胞中酸性磷酸酶的定位 70
实验19-7细胞中碱性磷酸酶的定位 72
实验19-8植物细胞免疫荧光原位杂交 73
实验20超微细胞化学技术 77
实验20-1细胞中ATP酶的超微细胞化学定位 78
实验20-2细胞中Ca2+的超微细胞化学定位 80
实验20-3细胞中超氧阴离子的超微细胞化学定位 82
实验21动物细胞培养 85
实验21-1鸡胚成纤维细胞的原代培养和观察 90
实验21-2细胞传代培养 92
实验21-3培养细胞观察与活力测定 95
实验21-4细胞分裂指数和生长曲线测定 98
实验21-5细胞的冻存与复苏 101
实验21-6动物细胞融合 103
实验22植物细胞培养与应用 107
实验22-1植物细胞培养技术 107
实验22-2 PEG诱导植物原生质体细胞融合 112
实验22-3外源DNA转化植物细胞技术 115
实验22-4藻类植物细胞的培养及脂肪体诱导和观察 119
主要参考文献 122
第四篇 创新性实验 125
实验23细胞凋亡的诱导、检测与功能研究 125
实验23-1动物细胞凋亡的诱导与检测 125
实验23-2植物细胞编程性死亡的诱导与检测 134
实验24细胞骨架观察与功能研究 137
实验24-1免疫荧光抗体标记法观察动物细胞微管 138
实验24-2鬼笔环肽标记法观察动物细胞微丝 140
实验24-3动物细胞中等纤维的观察 142
实验24-4考马斯亮蓝染色观察植物细胞微丝 144
主要参考文献 146
附录 常用试剂 148