第一篇 引言 3
第一章 实验室组成与无菌操作 3
第二篇 细胞工程基础实验 9
第二章 细胞观察、保存与细胞器分离 9
实验一 细胞计数与死活细胞鉴别 9
实验二 细胞冷冻与复苏 11
实验三 细胞器分离与鉴定 14
第三章 细胞融合 20
实验四 植物原生质体分离与培养 20
实验五 PEG诱导植物体细胞杂交 24
实验六 电融合诱导法促进动物细胞融合 28
第四章 植物组织培养 32
实验七 植物组织培养人工繁殖 32
实验八 植物茎尖培养与人工种子制备 34
第五章 植物单倍体与多倍体培养 37
实验九 植物花药培养 37
实验十 植物多倍体人工诱导 39
第六章 植物细胞培养 41
实验十一 拟南芥悬浮细胞培养与冷冻保存 41
第七章 动物细胞培养 44
实验十二 表皮角质细胞原代培养 44
实验十三 表皮角质细胞传代培养 47
实验十四 中国仓鼠卵巢细胞（CHO）表达制备乙肝表面抗原S蛋白 49
第三篇 细胞工程综合实验 55
第八章 植物细胞工程综合实验 55
实验十五 红豆杉细胞培养及次级代谢产物生产 55
实验十六 植物细胞应激过程中有关酶活力变化 59
实验十七 灵芝菌丝体培养制备灵芝酸 62
实验十八 基于发根农杆菌的大豆转基因研究 64
实验十九 根癌农杆菌介导的拟南芥花序浸润原位转基因 69
第九章 动物细胞工程综合实验 73
实验二十 抗幽门螺杆菌单克隆抗体的制备 73
实验二十一 脂质体介导绿色荧光蛋白基因在293T细胞中的表达 77
实验二十二 小鼠骨髓间质干细胞分离培养与鉴定 81
第十章 微藻细胞工程综合实验 85
实验二十三 螺旋藻气升式光生物反应器培养生产单细胞蛋白 85
实验二十四 原始小球藻兼性异养培养生产生物柴油 91