第一章 导论 1
第一节 机能学实验概论 1
一、机能学实验课教学的回顾与思考 1
二、医学实验教学的性质、任务、目的 1
三、机能实验教学方法概论 2
四、机能实验课教学内容和课程体系的改革 2
五、机能实验课教学对学生的要求 3
六、机能实验课教学对教师的要求 4
第二节 实验科学中的观察与思考 4
一、观察、思维、想像与实验科学 4
二、逻辑思维在实验科学中的应用 5
第三节 实验结果的处理及表示 7
一、实验结果的处理 7
二、实验结果的表示方法 8
第四节 实验报告及医学科研论文的写作要求 8
一、实验报告的写作要求 8
二、医学科研论文的写作格式和内容 9
第二章 实验动物基本知识及常用生理溶液配制 13
第一节 实验动物的种类、品系、特点及编号 13
一、实验动物的种类 13
二、实验动物的品系 13
三、常用实验动物的特点 14
四、实验动物的编号与标记 15
第二节 实验动物给药剂量的计算 16
一、药物浓度的表示方法 16
二、溶液浓度的计算 16
三、溶液浓度的换算 17
四、剂量的计算 17
五、人和动物及各类动物间药物剂量的换算方法 18
第三节 常用实验动物一般生理参数 21
第四节 机能学实验常用生理溶液及配制 23
一、常用生理溶液成分与含量 23
二、溶液浓度与剂量的计算 23
三、配制生理溶液的常用试剂及配制方法 26
第三章 生物信号记录基本知识及原理 28
第一节 生物膜的电学特性 28
一、生物膜的等效电路 28
二、膜时间常数 28
三、膜的离子电流和刺激电流与膜电位 30
四、刺激强度与膜电位 31
第二节 生物电信号的特性 32
第三节 生物电信号记录中的若干问题 32
一、生物电信号拾取 33
二、生物电信号放大 34
三、生物电信号记录 34
四、诱发生物电现象产生 34
五、干扰与抗干扰 35
第四节 生物信号放大器的性能指标及作用 35
一、通频带 35
二、高增益 37
三、高输入阻抗 38
四、高共模抑制比 38
五、信噪比 39
六、零漂 39
第五节 电刺激、电刺激器和刺激伪迹 40
一、电刺激 40
二、电刺激器 41
三、刺激伪迹 42
第六节 计算机生物信号记录分析系统的工作原理 42
第七节 BL-410生物机能实验系统 43
一、系统功能特点 44
二、软件介绍 45
第四章 实验设计与机能学实验数据的收集、整理 53
第一节 实验设计 53
一、实验设计的基本程序 53
二、实验设计的三大要素 53
三、实验设计的三大原则 55
四、实验设计方法 56
五、动物随机分组方法 57
六、动物实验前的准备 60
第二节 实验数据的完整性和准确性 61
第三节 实验数据的度量 62
一、定性度量 62
二、等级度量 62
三、等差区间度量 63
四、等比例度量 63
第四节 实验数据的记录方法 63
第五节 实验数据质量的评价 64
一、效度 64
二、信度 65
第六节 实验数据的分析 66
一、实验数据的逻辑检查 66
二、偏离数据的判断和处理 66
三、缺失数据的处理 66
四、数据分析中统计方法的正确选择 66
第七节 实验数据的计算机分析及制图 68
一、Microsoft Excel在机能实验数据统计分析中的应用 68
二、机能学实验中统计图的绘制及SigmaPlot的使用 72
第五章 机能实验常用器材及仪器 85
第一节 常用实验器材及使用 85
一、肌动器及其使用 85
二、换能器及其使用 85
三、电极 86
四、神经标本盒 89
五、三维调节器 89
第二节 常用手术器械及使用 89
一、手术刀 90
二、手术剪 90
三、手术镊 90
四、止血钳 90
五、持针器 90
六、皮钳 91
第三节 机能学实验常用仪器及使用 91
一、生理记录仪及其使用 91
二、心电图机及其使用 93
三、分光光度计及其使用 95
四、小动物呼吸机及其使用 99
五、钠钾氯电解质分析仪及其使用 101
六、血液分析仪及其使用 103
七、动态微循环观察测量分析仪及其使用 104
第六章 动物实验基本操作技术 108
第一节 实验动物的抓取与固定 108
一、蟾蜍 108
二、小白鼠 109
三、大白鼠 109
四、豚鼠 109
五、兔 110
六、狗 111
第二节 实验动物的给药途径和方法 111
一、蛙（或蟾蜍）淋巴囊注射法 111
二、灌胃法 111
三、皮下注射法 112
四、肌肉注射法 113
五、腹腔注射法 113
六、静脉注射法 113
第三节 实验动物的麻醉 114
一、麻醉药品的分类 114
二、常用麻醉药物的选择与用法 114
三、麻醉技巧 114
四、麻醉方法 116
五、使用麻醉药物的注意事项 117
第四节 实验动物的血液抗凝 117
一、体内抗凝 117
二、体外抗凝 117
第五节 实验动物的常用取血法 118
一、狗的取血法 118
二、兔取血法 118
三、大鼠和小鼠取血法 119
四、豚鼠取血法 119
第六节 实验动物的处死法 120
一、大量放血法 120
二、开放性气胸法 120
三、空气栓塞法 120
四、化学药物致死法 120
五、打击法 120
六、颈椎脱臼法 120
七、断头法 120
八、破坏脑脊髓法 121
第七节 机能学实验常用离体标本制备 121
一、坐骨神经干标本制备 121
二、离体骨骼肌标本制备 122
三、离体蛙心脏标本制备 122
四、离体主动脉条标本制备 124
五、离体肠管标本制备 124
六、离体子宫标本制备 124
七、离体气管标本制备 125
第八节 哺乳类动物常用手术操作技术 125
一、动物基本操作技术 125
二、头部手术 126
三、颈部手术 127
四、胸部手术 130
五、腹部手术 131
六、股部手术 132
七、心导管插管术 132
八、中心静脉压的测定 135
第七章 实验基本能力训练 136
实验一 哺乳类动物常见手术操作及压力、张力换能器使用训练 136
实验二 刺激诱发肌肉收缩现象的观察与分析 139
实验三 蛙心起搏点的观察与分析 141
实验四 脊髓反射的观察与反射弧分析 142
实验五 小肠平滑肌生理特性的观察与分析 144
第八章 基础性实验 147
实验一 低温、局麻药对蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度及不应期的影响 147
实验二 电刺激及化学因素对心脏活动的影响 150
实验三 红细胞渗透脆性测定、影响血液凝固的因素及血型鉴定 152
实验四 生物活性物质及药物对气管条舒缩的影响 156
实验五 痛阈测定及镇痛药对痛阈值的影响 158
实验六 兔减压神经放电及其影响因素 161
实验七 生理因素及药物对呼吸运动及膈神经放电的影响 163
实验八 各种因素对药物作用的影响 166
实验九 药物ED50和LD50的测定 169
实验十 药物血浆浓度的测定及t1/2、Vd等参数的计算 171
实验十一 竞争性拮抗药pA2值的测定 173
实验十二 有机磷农药中毒及其解救 175
实验十三 强心苷对在体豚鼠心脏的作用 176
实验十四 垂体后叶素对小白鼠离体子宫的作用 177
实验十五 高钾血症对心电活动的影响 178
实验十六 缺氧及耐缺氧 181
实验十七 血浆渗透压和毛细血管壁通透性改变在水肿发生中的作用 185
实验十八 人体心电图描记 187
实验十九 人体动脉血压的测定 188
第九章 提高型实验 192
实验一 抗心律失常药对心肌动作电位时程与不应期的影响 192
实验二 神经、体液因素及药物对动脉血压的影响 194
实验三 神经和体液因素对循环、呼吸和尿生成的影响 196
实验四 急性心肌缺血对心功能的影响 198
实验五 吸入不同浓度的氧和二氧化碳对家兔呼吸、循环功能的影响 200
实验六 双盲实验方法鉴别未知药物 202
实验七 利多卡因对毒毛花苷K所致家兔心律失常的作用 203
实验八 胸膜腔内压与动、静脉血压变动及影响因素 205
实验九 不同药物对家兔骨骼肌的影响 206
实验十 局部麻醉药的药理作用及毒性比较 208
实验十一 兔大脑皮质诱发电位及其影响 210
实验十二 呼吸功能不全 212
实验十三 窒息所致的动物呼吸、循环衰竭及复苏 214
实验十四 急性肾功能衰竭时肾功能的变化及其影响因素的分析 215
实验十五 急性右心衰竭及其血流动力学变化 219
实验十六 影响心功能的因素及实验性心力衰竭的发生与治疗 220
实验十七 肝功能不全 224
实验十八 家兔失血性休克及抢救 225
实验十九 家兔酸碱平衡紊乱 228
实验二十 肾上腺摘除对应激能力及水盐代谢的影响与药物替代疗法 231
实验二十一 大鼠主动回避反应的建立和消退以及某些因素的影响 232
实验二十二 大鼠体外海马脑片的制备及CA1区突触后电位的观察 234
实验二十三 离体心室乳头肌动作电位及药物作用的影响 237
实验二十四 用全细胞式和贴附式膜片钳技术记录颈上神经节细胞膜钙通道电流 240
实验二十五 人体肺通气功能测定与临床评价 247
实验二十六 人体左心室功能的无创测定及评价 252
第十章 探索性实验 254
第一节 探索性实验的目的 254
第二节 选题范围 254
第三节 实验程序与实施方案 255
第十一章 病例讨论 257
附：药物制剂与处方学 264