第一部分 基本实验技能 1
实验一 光学显微镜的使用及维护 3
实验二 临时装片及染色 7
实验三 徒手切片法 9
实验四 显微测量技术 11
实验五 整体透明制片法 13
实验六 组织离析制片技术 15
实验七 冰冻切片技术 17
实验八 石蜡切片技术 19
实验九 被子植物花图式与花程式 23
实验十 植物分类检索表的编制与使用 25
第二部分 基础实验 29
实验十一 植物细胞的基本结构及后含物 31
实验十二 植物的组织——分生组织 36
实验十三 植物的组织——成熟组织 40
实验十四 藻类植物 45
实验十五 菌类植物和地衣植物 51
实验十六 苔藓植物 57
实验十七 蕨类植物 62
实验十八 裸子植物 66
实验十九 根的形态结构与发育 71
实验二十 茎的形态和初生结构 77
实验二十一 茎的次生结构 81
实验二十二 叶的形态和结构 84
实验二十三 花的形态结构 90
实验二十四 花药和子房的结构 93
实验二十五 种子和果实结构与发育 96
第三部分 综合和研究性实验 101
实验二十六 植物细胞器的荧光标记及观察 103
实验二十七 植物营养器官的趋同适应及趋异适应观察 106
实验二十八 植物细胞有丝分裂与减数分裂 112
实验二十九 植物染色体核型分析 115
实验三十 植物细胞程序性死亡的TUNEL检测 119
实验三十一 植物细胞微丝骨架的活体观察 122
实验三十二 花粉活力与柱头可授性检测 124
实验三十三 花粉体外萌发及花粉管生长的观察 126
实验三十四 人工传粉实验 129
实验三十五 植物花粉管向胚珠的定向生长 131
实验三十六 人工诱导针叶树创伤树脂道的形成 134
实验三十七 校园植物观察与识别 137
实验三十八 校园植物物候期的观测与记录 139
实验三十九 植物总DNA的提取 143
实验四十 植物总RNA的提取 146
实验四十一 PCR扩增技术 150
实验四十二 植物分子标记及应用 155
实验四十三 植物遗传多样性检测 171
实验四十四 植物基因组测序原理与应用 174
实验四十五 植物分子系统进化树的构建 182
主要参考文献 187
附录 189
附录一 染色原理 191
附录二 常用试剂的配制和使用 193
附录三 常用缓冲液的配制 198