第一篇 基本实验操作及常用仪器使用 1
第一章 基本实验操作 1
第一节 离心技术 1
第二节 电泳技术 3
第三节 分光光度技术 7
第四节 PCR技术 10
第二章 常用仪器使用 14
第一节 常用玻璃器皿的使用方法 14
第二节 实验室常用玻璃器皿的清洁方法 15
第三节 移液器的正确使用方法 17
第四节 实验室常用天平的种类与使用方法 20
第二篇 基本实验 23
第三章 医学细胞生物学实验 23
实验一 光学显微镜的构造和使用方法 23
实验二 细胞的显微测量技术 28
实验三 细胞器的光镜观察 29
实验四 细胞骨架的观察 31
实验五 细胞内化学成分（糖原、蛋白质及核酸）的显示 33
实验六 细胞组分的分级分离 36
实验七 细胞生理活动的观察 38
实验八 细胞融合 41
实验九 体外培养细胞的计数、测量与活性鉴别 43
实验十 细胞有丝分裂的制片及观察 49
实验十一 细胞减数分裂的制片及观察 51
实验十二 细胞的原代培养 53
实验十三 细胞的传代培养 55
实验十四 培养细胞的冻存、复苏与运输 56
第四章 医学遗传学实验 59
实验一 小鼠骨髓细胞染色体标本制备与分析 59
实验二 人类外周血淋巴细胞培养及染色体制备与分析 60
实验三 人类体细胞染色体的核型分析 63
实验四 正常人体细胞G显带染色体制备与观察 64
实验五 人类体细胞G显带染色体的核型分析 66
实验六 人类外周血淋巴细胞姊妹染色单体互换标本的制备与分析 68
实验七 银染核仁形成区与近端着丝粒染色体随体联合 70
实验八 人类性染色质的制片与观察 71
实验九 动物细胞微核测定技术 73
实验十 皮纹分析与PTC尝味 75
实验十一 遗传咨询 78
实验十二 人类基因组DNA 提取 79
实验十三 DNA限制性内切酶酶解及酶解片段的电泳分离 81
实验十四 DNA分子杂交 82
实验十五 荧光原位杂交技术 83
实验十六 Y-染色体短串联重复序列的多态性分析 85
实验十七 表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 88
第三篇 综合实验 91
第五章 综合实验项目 91
实验一 应用细胞融合技术制备染色体提前凝集标本 91
实验二 培养细胞的分裂指数和集落形成率的测定 92
实验三 细胞克隆形成实验 94
实验四 肿瘤细胞侵袭实验 95
实验五 肿瘤细胞对HUVECs的黏附实验 96
实验六 体外培养细胞的转化 97
实验七 大肠杆菌（E.coli）感受态细胞的制备和转化 99
实验八 培养细胞的凋亡检测 101
实验九 总RNA的提取及RT-PCR扩增目的基因 104
实验十 PCR技术的应用 108
实验十一 PCR-ELISA端粒酶检测法 114
实验十二 增强型绿色荧光蛋白的转染及鉴定 117
第四篇 创新实验 119
第六章 创新实验项目 119
实验一 假性肥大型肌营养不良症的诊断 119
实验二 细胞遗传物质损伤检测实验设计 119
实验三 紫杉醇诱导HL-60细胞凋亡的检测 120
实验四 绿色荧光蛋白标记的融合蛋白在细胞内的动态分布观察 120
实验五 地中海贫血的基因诊断 121
实验六 天然药物抗肿瘤作用实验设计 121
实验七 MTHFR基因与糖尿病肾病相关性研究 122
实验八 细胞内GADPH的表达和检测 123
实验九 利用Y-STR进行群体遗传结构分析实验设计 123
实验十 肿瘤基因治疗实验设计 124
第五篇 虚拟仿真实验 125
第七章 虚拟仿真实验项目 125
实验一 细胞与分子生物学实验室基本操作 125
实验二 细胞培养虚拟实验 126
实验三 内质网的应激电镜观察实验 126
实验四 核酸提取及聚合酶链反应（PCR）实验 126
实验五 蛋白提取及免疫印迹（Western blot）和酶联免疫吸附试验（ELISA）虚拟实验 127
附录 128
附录一 实验室规则 128
附录二 医学细胞学与遗传学实验报告的书写 128
附录三 常用溶液的配制 129
附录四 医学细胞学与遗传学实验报告 136
参考文献 163