第一章 动物生理学实验基础 1
一、生理学实验课的目的和要求 1
（一）实验课的目的和要求 1
（二）实验结果的记录 2
（三）实验报告的撰写 3
二、动物生理学实验器械及其操作方法 3
（一）手术器械 4
（二）其他器械 5
（三）器械的消毒 6
三、动物生理学实验仪器 7
（一）电刺激系统 7
（二）生命维持系统 9
（三）信号采集系统 10
（四）计算机生物信号实验系统 12
四、实验动物操作技术 19
（一）常用实验动物介绍 19
（二）动物的标记 21
（三）动物的抓取 21
（四）动物的给药方法 23
（五）动物的麻醉 25
（六）动物体液采集技术 28
（七）实验动物的处死和护理方法 30
（八）动物生理手术基本操作技术 31
（九）部分动物生理学慢性实验手术方法 34
第二章 神经和肌肉 38
实验1 蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备 38
实验2 生物电现象的观察 40
实验3 刺激强度与肌肉收缩的关系 41
实验4 强度-时间曲线的测定 42
实验5 神经干动作电位观察及其传导速度的测定 43
实验6 神经干不应期的测定 46
实验7 骨骼肌的单收缩和复合收缩 47
第三章 血液 49
实验8 血液组成和红细胞比容的测定 49
实验9 血细胞计数 51
实验10 血红蛋白含量的测定 54
实验11 红细胞渗透脆性的测定 55
实验12 红细胞沉降率的测定 57
实验13 血量的测定 58
实验14 白细胞分类 59
实验15 白细胞的机能 61
实验16 血液凝固 63
实验17 ABO血型鉴定和交叉配血 64
第四章 血液循环 67
实验18 蛙心起搏点分析 67
实验19 离体蛙心灌流 68
实验20 期前收缩和代偿间歇 70
实验21 容积导体及心电传导 72
实验22 心电图描记 74
实验23 心电与收缩活动的时相关系 76
实验24 蛙肠系膜微循环观察 77
实验25 动脉血压的直接测定及其影响因素 79
实验26 减压神经放电 81
第五章 呼吸 84
实验27 胸膜腔内压的测定 84
实验28 呼吸运动的调节 85
第六章 消化和能量代谢 88
实验29 胃肠运动的直接观察 88
实验30 消化道平滑肌的生理特性 89
实验31 小肠吸收与渗透压的关系 91
实验32 小鼠能量代谢的测定 92
第七章 泌尿 94
实验33 影响尿生成的因素 94
第八章 神经 96
实验34 反射弧的分析 96
实验35 脊髓背根和腹根的机能 98
实验36 脊髓反射 99
实验37 交互抑制 100
实验38 小脑的生理作用 101
实验39 大脑皮层的诱发电位 103
实验40 大脑皮层运动区的定位 104
实验41 去大脑僵直 106
实验42 迷路的破坏 107
实验43 血-脑屏障 108
第九章 内分泌和生殖 110
实验44 甲状腺素对蝌蚪变态的影响 110
实验45 胰岛素和肾上腺素对血糖水平的调节 111
实验46 摘除肾上腺对动物的影响 112
实验47 甲状旁腺摘除对血钙水平的影响 113
实验48 垂体摘除对体内某些内分泌腺的影响 114
实验49 雄激素对鸡冠发育的作用 115
实验50 雌激素对雌性动物副性器官发育的影响 116
实验51 大鼠离体子宫平滑肌的运动描记 118
实验52 蛙的受精及卵裂的观察 120
第十章 动物生理学实验试题 122
一、实验试题 122
（一）选择题 122
（二）名词解释 129
（三）问答题 129
（四）实验考试例题 131
二、实验试题答案 131
（一）选择题 131
（二）名词解释题 132
（三）问答题 135
（四）实验考试例题答案 146
主要参考文献 149
附录 150
附录1 常用生理盐溶液的配制 150
附录2 常用抗凝剂 151
附录3 实验设计 151
附录4 常用统计指标和方法 153
附录5 综合性实验示例：消化液的消化作用及其分泌的调节 156