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第一章 生物技术实验概论 1

第一节 实验设计的基本程序 1

第二节 实验设计的要素 1

第三节 实验设计的原则 2

第四节 实验须知 2

第五节 实验报告 3

第二章 蛋白相关技术 5

实验一 Lowry氏法测定蛋白质含量 5

实验二 蛋白质的两性反应和等电点的测定 7

实验三 血清蛋白质醋酸纤维薄膜电泳 9

实验四 聚丙烯酰胺凝胶电泳法分离血清蛋白质 11

实验五 凝胶层析法分离蛋白质 14

实验六 血清乳酸脱氢酶同工酶的分离 16

实验七 温度、pH、激活剂、抑制剂对酶活性的影响 19

实验八 酵母蔗糖酶米氏常数（Km）的测定 21

实验九 谷丙转氨酶（GPT）活性测定 25

实验十 抗核抗体的检测 28

实验十一 酶联免疫吸附试验 29

实验十二 测定人血清总IgE的亲和素—生物素微量ELISE 31

实验十三 溶血反应 34

实验十四 血清总补体活性检测（CH50） 36

实验十五 血清中红细胞免疫抑制因子和促进因子活性测定 38

实验十六 间接凝集反应 39

实验十七 沉淀反应 45

实验十八 细胞粘附分子的检测 53

实验十九 细胞因子及受体的检测 55

第三章 核酸相关技术 63

实验一 动物组织细胞内核酸的分离、鉴定和DNA的提取、含量测定 63

实验二 质粒DNA的提取和纯化 67

实验三 人类基因组DNA的提取 69

实验四 DNA的限制性内切酶酶解及酶解片段的电泳分离 71

实验五 PCR技术的应用 72

实验六 PCR-RFLP分析技术 74

实验七 PCR-SSCP分析技术 76

实验八 DNA探针的分离回收及标记 78

实验九 Southern印迹转移 80

实验十 DNA分子杂交 81

实验十一 细胞总RNA和mRNA的提取 83

实验十二 cDNA文库的构建 85

实验十三 荧光原位杂交技术 87

实验十四 比较基因组杂交 89

第四章 细胞相关技术 91

实验一 E.coli感受态细胞的制备和转化 91

实验二 细胞形态结构的观察和细胞计数 93

实验三 细胞组份的化学反应 97

实验四 动物细胞的显微测量 99

实验五 银染核仁形成区的光镜标本制备及观察 100

实验六 人类体细胞的核型分析 102

实验七 人类外周血淋巴细胞培养与染色体标本制备 104

实验八 G显带染色体标本的制备与分析 106

实验九 高分辨显带染色体标本的制备 111

实验十 X染色质标本的制作与观察 113

实验十一 姊妹染色单体交换实验 115

实验十二 银染核仁形成区与近端着丝粒染色体随体联合 117

实验十三 细胞有丝分裂和减数分裂形态观察 118

实验十四 细胞生理活动的实验观察 121

实验十五 细胞微丝与细胞形态关系的观察 123

实验十六 细胞的原代培养和传代培养 125

实验十七 培养细胞的冻存与复苏 127

实验十八 培养细胞的分裂指数和集落形成率的测定 129

实验十九 细胞融合 131

实验二十 应用细胞融合技术制备染色体提前凝集标本 132

实验二十一 人外周血树突状细胞前体的分离与培养 134

实验二十二 T细胞检测技术 136

实验二十三 NK细胞活性检测 146

实验二十四 直接凝集反应 148

实验二十五 红细胞C3b受体花环及免疫复合物花环试验 152

第五章 其它 154

实验一 动物血清过敏症 154

实验二 Ⅳ型变态反应的检测—迟发型皮肤试验 155

实验三 染色体的制备方法 156

实验四 邻甲苯胺法测定血清葡萄糖 157

实验五 维生素C的性质与食物中维生素C的测定 159

附录 163