生物化学与分子生物学实验教程PDF电子书下载

第一部分　普通生物化学实验 1

一、基础实验 1

实验一　微量凯氏（Kjeldahl）定氮法 1

实验二　氨基酸的分离鉴定——纸层析法 4

实验三　蛋白质的性质实验（一）——蛋白质及氨基酸的呈色反应 6

实验四 蛋白质的性质实验（二）——蛋白质的等电点测定和沉淀反应 14

实验五　血清蛋白的醋酸纤维薄膜电泳 19

实验六　核酸的定量测定——定磷法 21

实验七　酵母核糖核酸的分离及组分鉴定 25

实验八　酶的特性 27

二、开放及综合设计性实验 32

实验九　血糖的定量测定（Hagedorn-Jensen二氏定糖法） 32

实验十　脂肪酸的β-氧化 35

实验十一　血液中转氨酶活力的测定（分光光度法） 37

实验十二 2,6-二氯酚靛酚法测定维生素C的含量 40

实验十三　过氧化氢酶的作用 42

实验十四　过氧化物酶的作用 43

实验十五　尿液淀粉酶活力测定（Winslow氏法） 45

实验十六　柑橘皮提取果胶 47

第二部分　生物化学技术大实验 48

一、基础实验 48

实验一　离子交换柱层析法分离氨基酸 48

实验二　蛋白质含量的测定 51

实验三　凝胶过滤法测定蛋白质相对分子质量 57

实验四 薄层层析法分离AMP、ADP和ATP 60

实验五　动物肝脏DNA的制备和含量测定 62

实验六　DNA的琼脂糖凝胶电泳 65

二、开放及综合设计性实验 69

实验七　SDS-聚丙烯酰胺电泳法测定蛋白质相对分子质量 69

实验八　DNS-Cl法分析蛋白质N-末端氨基酸 77

实验九　酵母蔗糖酶的提取及纯化 80

实验十　蔗糖酶动力学研究 89

实验十一　脲酶动力学研究 100

实验十二　乳酸脱氢酶（LDH）同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE） 105

实验十三　L-谷氨酸脱羧酶的固定化 111

实验十四　枯草杆菌细胞固定化 113

实验十五　细胞色素c的制备及测定 114

实验十六　大鼠肝细胞的单细胞凝胶电泳 120

第三部分　分子生物学实验 123

一、基础实验 123

实验一　质粒DNA的提取 123

实验二　质粒DNA的酶切及凝胶电泳 129

实验三　大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 135

实验四　重组质粒的连接、转化及筛选 139

实验五　基因组DNA的提取及检测 144

实验六　RNA的分离与纯化 149

实验七　PCR基因扩增 152

实验八　DNA片段的回收与纯化 156

实验九　外源基因在大肠杆菌中的诱导及表达 158

实验十　核酸杂交技术 160

实验十一　双向聚丙烯酰胺凝胶电泳 165

二、开放及综合设计性实验 169

实验十二　用exoⅢ外切酶构建亚克隆 169

实验十三　利用T载体克隆绿色荧光蛋白（GFP）基因 172

实验十四　cDNA文库构建 175

三、分子生物学新实验技术 180

第一节　生物芯片技术 180

第二节　核糖核酸干扰技术（RNAi技术） 186

第三节　原位核酸分子杂交技术 190

附录 195

附录一　实验室规则 195

附录二　实验室安全及防护知识 196

附录三　实验室常识 199

附录四　常用数据表 201

附录五　核酸基础数据 207

附录六　缓冲溶液 208

附录七　常用缓冲液的配制 209

附录八　常用贮存液的配制 215