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生物工程与技术专业基础实验教程
生物工程与技术专业基础实验教程

生物工程与技术专业基础实验教程PDF电子书下载

生物

  • 电子书积分:14 积分如何计算积分?
  • 作 者:于源华主编
  • 出 版 社:北京:北京理工大学出版社
  • 出版年份:2016
  • ISBN:9787568225472
  • 页数:420 页
图书介绍:本书是与高校生物工程和生物技术专业基础课程相配套的综合性实验指导用书,包括生物化学、分子生物学、微生物学和细胞生物学等四门实验课的实验原理与技术,这几门实验课是生物工程和生物技术专业必修的专业基础实验课程。本基础实验教材,使学生在了解生物工程与技术领域发展概貌的同时,掌握生物工程和生物技术专业基础实验的基本技能,加强学生创新思维、创新能力和实践能力的培养,为提高学生生物技术实验基本技能、科学素养和创新能力,创建实验教学平台,旨在培养同现代化建设和市场经济体制要求相适应的生物工程产业高素质综合型人才。
《生物工程与技术专业基础实验教程》目录

第一章 生物化学实验 1

实验1 氨基酸的分离鉴定——纸层析法 1

实验2 总氮量的测定——凯氏定氮法 3

实验3 蛋白质脱盐(透析和凝胶过滤) 7

实验4 考马斯亮蓝G-250法测定蛋白质含量 10

实验5 Folin-酚法测定蛋白质含量 12

实验6 蛋白质浓度测定——双缩脲法 14

实验7 紫外吸收法测定蛋白质含量 16

实验8 大豆蛋白的提取及浓度测定 18

实验9 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE) 20

实验10 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(银染色法) 24

实验11 动物细胞蛋白质的提取和含量测定 26

实验12 离子交换柱层析法分离蛋白质 28

实验13 大肠杆菌DNA和RNA的同步提取法 33

实验14 菜花中核酸的分离和鉴定 34

实验15 酵母核糖核酸的分离及组分鉴定 36

实验16 酵母RNA提取与地衣酚显色法 38

实验17 紫外吸收法测定核酸含量 40

实验18 糖类的性质实验——糖类的颜色反应 42

实验19 糖类的性质实验——糖类的还原作用 45

实验20 还原糖和总糖含量的测定——3,5-二硝基水杨酸比色定糖法 46

实验21 可溶性总糖的测定(地衣酚-硫酸法) 49

实验22 蔗糖酶米氏常数的测定 50

实验23 肌糖元的酵解作用 52

实验24 粗纤维的测定(酸性洗涤剂法) 54

实验25 细胞中糖类化合物的提取及成分鉴定 56

实验26 脂肪的提取和定量测定 63

实验27 脂肪碘值的测定 65

实验28 维生素C的定量测定 67

实验29 酶的特性 69

实验30 超氧化物歧化酶的分离纯化 75

实验31 亲和层析纯化乳酸脱氢酶 80

实验32 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离乳酸脱氢酶同工酶(活性染色鉴定法) 84

实验33 黑木耳多糖的提取、分离、纯化及初步测定 88

实验34 单向定量免疫电泳 89

实验35 IEF电泳测定蛋白质等电点 92

实验36 免疫印迹技术与酶联免疫吸附测定法 98

实验37 利用RNAi技术鉴定基因功能 103

实验38 胰蛋白酶的比活力测定 107

实验39 基因工程重组蛋白的表达、分离、纯化和鉴定 108

实验40 维生素A的提取及定量测定 112

实验41 植物总DNA的提取及鉴定 113

实验42 大肠杆菌总DNA的提取及鉴定 114

第二章 分子生物学实验 116

实验1 质粒DNA的提取 116

实验2 琼脂糖凝胶电泳鉴定DNA 124

实验3 琼脂糖凝胶中DNA片段的回收 127

实验4 DNA定量分析 130

实验5 DNA的酶切 132

实验6 真核细胞RNA的提取 137

实验7 pUC57 T载体的制备 139

实验8 DNA的连接 145

实验9 重组DNA的转化 148

实验10 转化子的鉴定 150

实验11 PCR实验 153

实验12 RT-PCR实验 156

实验13 从序列数据库查找序列 158

实验14 PCR引物设计软件 159

实验15 核酸分析软件DNASIS 160

实验16 基因组DNA的提取及检测 161

实验17 Southern杂交 165

实验18 Northern杂交 169

实验19 免疫印迹(Western blotting) 175

第三章 微生物学实验 178

Ⅰ 显微镜技术 178

实验1 普通光学显微镜的使用 178

实验2 微生物细胞大小的测定 182

实验3 显微镜直接计数法 184

Ⅱ 微生物的分离纯化与菌种保藏 187

实验4 培养基的制备 187

实验5 消毒与灭菌 192

实验6 微生物的分离与纯化 196

实验7 噬菌体的分离纯化与效价测定 201

实验8 平板菌落计数法 206

实验9 菌种保藏 208

Ⅲ 微生物的形态学观察实验 217

实验10 细菌的简单染色和革兰氏染色 217

实验11 细菌运动性观察 220

实验12 细菌的芽孢染色法 223

实验13 荚膜染色法 225

实验14 酵母菌的形态观察及死活细胞鉴别 227

实验15 放线菌的培养及形态观察 229

实验16 霉菌的培养及形态观察 231

Ⅳ 微生物生理生化实验 233

实验17 细菌生长曲线的制作 233

实验18 厌氧微生物的培养技术 236

实验19 环境因素对微生物生长发育的影响 239

实验20 大分子物质的水解实验 254

实验21 IMViC和硫化氢实验 256

实验22 糖发酵实验 259

Ⅴ 微生物专题实验 261

实验23 抗原与免疫血清的制备 261

实验24 沉淀反应 263

实验25 病毒的血凝实验 265

实验26 水中细菌总数的测定 266

实验27 多管发酵法测定水中大肠菌群 269

实验28 抗药性突变株的分离 274

实验29 牛乳中细菌的检查 275

Ⅵ 实际应用实验 278

实验30 发酵酸乳的制作 278

实验31 秦皮的抑菌作用 281

第四章 细胞生物学实验 284

Ⅰ 细胞的形态结构 284

实验1 细胞形态结构的观察和显微测量 284

实验2 细胞活体染色技术 287

实验3 线粒体的分离与观察 290

实验4 叶绿体的分离与荧光观察 293

实验5 细胞器的分离 295

实验6 细胞骨架观察 301

实验7 联会复合体的染色与观察 308

Ⅱ 细胞化学 310

实验8 Feulgen反应显示DNA 310

实验9 细胞中过氧化物酶的显示 314

实验10 细胞中碱性蛋白的显示 315

实验11 酸性磷酸酶的定位 317

实验12 叶绿体DNA的提取与检测 319

Ⅲ 细胞生理 321

实验13 细胞膜透性的观察 321

实验14 细胞电泳 322

实验15 植物原生质体融合与体细胞杂交 326

实验16 小鼠巨噬细胞吞噬羊红细胞实验 328

Ⅳ 细胞培养技术 330

实验17 细胞培养的准备——实验用品的清洗与消毒 330

实验18 动物细胞培养 334

实验19 细胞冻存技术 340

实验20 植物原生质体的分离、培养 343

实验21 植物细胞的悬浮培养 347

实验22 细胞集落形成实验 349

实验23 MTT法检测细胞活力 351

Ⅴ 染色技术与核型分析 354

实验24 小鼠骨髓染色体的制备与C带染色 354

实验25 植物染色体标本的制备和观察 358

实验26 保护性胶显影剂和硝酸银染核仁组织区的一步染色法 360

Ⅵ 细胞工程 363

实验27 早熟染色体凝集的诱导和观察 363

实验28 细胞凝集与细胞融合实验 366

实验29 单克隆抗体的制备 369

Ⅶ 其他技术 377

实验30 细胞凋亡的测定 377

实验31 荧光标记技术 387

附录 391

附录1 常用试剂种类配制 391

附录2 常用试剂的配制 405

附录3 常用染色液的配制 409

附录4 缓冲液的配制 415

附录5 指示剂的配制 418

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