细胞分子生物学技术教程 第2版PDF电子书下载

第一篇　分子生物学技术 3

第一章　DNA的制备和分析 3

实验1　细菌质粒的制备和分析 5

实验2　植物基因组DNA的制备和分析 11

实验3　酵母DNA的制备 15

实验4　λ噬菌体DNA的提取和分析 18

第二章　DNA的克隆 22

实验5　DNA的限制酶剪切 25

实验6　DNA片段的回收纯化 28

实验7　载体与目的基因的体外重组 30

实验8　重组DNA的转化和蓝白筛选 32

实验9　真核基因在原核细胞中的表达 36

第三章　PCR相关技术 39

实验10　PCR法快速筛选阳性克隆 44

实验11　转基因烟草的PCR检测 46

实验12　逆转录PCR 48

实验13　PCR产物的T/A克隆 54

实验14　RACE法获得全长cDNA 57

第四章　RNA的制备和分析 64

实验15　植物组织总RNA的制备 66

实验16　RNA的定量和完整性分析 70

实验17　mRNA的分离和纯化 73

实验18　表达型cDNA文库的构建 78

第五章　核酸分子杂交技术 86

实验19　同位素标记探针的分子杂交 93

实验20　DIG标记探针的分子杂交 97

实验21　噬菌斑的原位杂交 102

实验22　Northern印迹杂交 105

第六章　蛋白质电泳技术 108

实验23　SDS-PAGE和蛋白分子量的测定 108

实验24　IEF-SDS双向凝胶电泳 118

实验25　肽质量指纹谱技术 125

实验26　高效毛细管电泳分离蛋白质 130

实验27　植物同工酶电泳分析 135

第七章　显微镜技术 141

第二篇　细胞生物学技术 141

实验28　普通光学显微镜技术 142

实验29　几种研究用显微镜技术 153

实验30　电子显微镜技术 162

实验31　电镜样品制备技术 167

第八章　细胞培养与功能鉴定 178

实验32　酵母细胞的培养与观察 178

实验33　酵母细胞的异源功能互补 181

实验34　植物细胞的悬浮培养 189

实验35　植物原生质体的分离与培养 190

第九章　细胞膜技术 194

实验36　细胞膜的渗透性 194

实验37　植物细胞质膜的分离和纯化技术 197

实验38　带有GFP的质膜蛋白分选观察 203

实验39　细胞的融合 207

第十章　细胞生理生化 211

实验40　离心技术与叶绿体的分离 211

实验41　植物细胞氧化还原活性的测定 217

实验42　核酸（DNA和RNA）的细胞核定位观察 219

实验43　细胞骨架的光学显微镜观察 224

实验44　细胞凋亡小体和梯状DNA的诱导和观察 226

第十一章　植物转基因技术 232

实验45　农杆菌介导的叶盘法转化烟草 237

实验46　基因枪转化技术 243

实验47　瞬时表达分析启动子活性 249

实验48　顺式元件与反式因子间的凝胶阻滞分析 254

实验49　c-myc表位附加标签用于蛋白在亚细胞定位及western blotting检测 258

附录1　有关核酸的常用数据 262

附录 262

附录2　与DNA凝胶电泳有关的数据 264

附录3　缓冲液 265

附录4　常用的生物酶类和抗生素类 268

附录5　常用培养基 270

附录6　用于噬菌体和酵母操作的溶液 274

附录7　杂交实验中用于降低背景的封闭剂 276

附录8　生物信息学常用数据库及其软件 278

附录9　分子生物学有毒试剂的净化处理和安全使用 284