生物学实验教程PDF电子书下载

第一章　植物学实验 1

实验一　植物细胞内贮藏物质的观察和鉴定 1

实验二　细胞壁的观察及成分鉴定 3

实验三　植物的成熟组织 6

实验四　茎的形态与结构 12

实验五　叶的形态与结构 18

实验六　花的形态与结构 23

实验七　胚的发育与种子的形成 26

实验八　植物界的基本类群 29

实验九　被子植物分类主要形态学基础知识 32

实验十　植物分类（一）藻类、菌类植物 37

实验十一　植物分类（二）地衣、苔藓植物 38

实验十二　植物分类（三）蕨类植物 39

实验十三　植物分类（四）裸子植物——松科 40

实验十四　植物分类（五）马兜铃科、蓼科、毛茛科、木兰科 41

实验十五　植物分类（六）蔷薇科、豆科、十字花科、樟科 43

实验十六　植物分类（七）五加科、伞形科、马鞭草科、唇形科 45

实验十七　植物分类（八）玄参科、桔梗科、葫芦科、菊科 47

实验十八　植物分类（九）百合科、鸢尾科、兰科 49

第二章　生物化学实验 50

实验一　紫外吸收法测定蛋白质含量 50

实验二　双缩脲法（Biuret法）测定蛋白质含量 53

实验三　Folin-酚试剂法（Lowry法）测定蛋白质含量 55

实验四　考马斯亮蓝染色法（Bradford法）测定蛋白质含量 57

实验五　2,4-二硝基苯肼法测定总维生素C含量 59

实验六　茚三酮显色法测定总氨基酸含量 61

实验七　序列超速离心分离血浆脂蛋白 63

实验八　血清脂类硅胶G薄层层析 66

实验九　凝胶层析法纯化低密度脂蛋白（LDL） 69

实验十　血清γ-球蛋白的分离纯化 74

实验十一　亲和层析法分离纯化载脂蛋白E 77

实验十二　血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳 80

实验十三　血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳定量测定 82

实验十四 SDS-PAGE凝胶电泳法测定蛋白质的相对分子量 85

实验十五　等电聚焦电泳法测定蛋白质的等电点 93

实验十六　大鼠肝脏蛋白质的双向电泳分析 98

实验十七　酶作用的高度专一性 102

实验十八　酶活力的影响因素 105

实验十九　血清碱性磷酸酶米氏常数和酶活性的测定 109

实验二十　琼脂糖电泳法测定乳酸脱氢酶同工酶 113

实验二十一　赖氏法测定血清丙氨酸氨基转移酶 116

实验二十二　血糖影响因素与血糖测定 119

实验二十三　血清总胆固醇测定 121

实验二十四　血浆载脂蛋白A-I(apoA-I)的分离纯化 123

实验二十五　血浆载脂蛋白B-100(apoB-100)的分离纯化 129

第三章　微生物学实验 131

实验一　培养基的配制 131

实验二　消毒与灭菌 136

实验三　微生物的分离培养 143

实验四　显微镜的使用 149

实验五　标本制备及染色 158

实验六　细菌培养特征的观察 163

实验七　放线菌、霉菌、酵母的形态观察 166

实验八　从自然环境中分离噬菌体 170

实验九　病毒、噬菌体 172

实验十　担子菌的弹射分离法 176

实验十一　微生物在自然界的分布 178

实验十二　微生物数量的测定 182

实验十三　微生物的生理生化反应 188

实验十四　环境因素对微生物生长发育的影响 195

实验十五　微生物遗传与变异 199

实验十六　酵母细胞的固定化技术 204

实验十七　微生物菌种保藏 206

第四章　免疫学实验 211

实验一　可溶性蛋白多克隆抗体的制备 211

实验二　直接凝集试验——ABO血型鉴定 214

实验三　单向免疫扩散试验 216

实验四　双向免疫扩散试验 218

实验五　对流免疫电泳 220

实验六　免疫浊度测定——IgG、IgM、IgA透射比浊测定 222

实验七　补体溶血试验 224

实验八　酶标记免疫技术——ELISA检测乙肝表面抗原 226

实验九　放射免疫技术 230

实验十　斑点免疫层析技术——“一步金法”早早孕检测 232

实验十一　外周血淋巴细胞分离法 234

实验十二　E玫瑰花环试验 236

实验十三　酶免疫组化技术——T细胞表面CD3分子的检测 238

实验十四　淋巴细胞转化试验 240

实验十五　抗体生成细胞检测——溶血空斑试验 243

实验十六　小白鼠巨噬细胞功能测定 246

实验十七 流式细胞检测技术——人外周血Th1/Th2细胞亚群检测 248

实验十八　酶免疫印迹技术 253

实验十九　单克隆抗体制备技术 256

第五章　遗传学实验 260

实验一　有丝分裂 260

实验二　减数分裂 263

实验三　果蝇主要性状观察和雌雄的鉴别 266

实验四　果蝇培养 268

实验五　果蝇单因子试验 270

实验六　果蝇二对因子杂交试验 272

实验七　果蝇的伴性遗传 274

实验八　果蝇的三点测交试验 276

实验九　果蝇唾腺染色体的制作与观察 279

实验十　粗糙链孢霉的分离和交换 281

实验十一　植物多倍体的诱发和观察 284

实验十二　植物有性杂交 285

实验十三　人体外周血淋巴细胞培养及染色体标本制备 287

实验十四　小鼠骨髓细胞染色体的标本制备 290

实验十五　贴壁培养细胞的染色体标本制备 292

实验十六　正常人非显带染色体的核型分析 294

实验十七　X染色质的标本制备 297

实验十八　微核检测技术 299

第六章　细胞生物学实验 301

实验一　细胞的形态结构 301

实验二　细胞运动 302

实验三　胞质环流 303

实验四　细胞吞噬 304

实验五　细胞凝聚反应 305

实验六　死活细胞鉴别 306

实验七　细胞膜的渗透性 308

实验八　大鼠肝线粒体的分离 310

实验九　动物细胞微丝束的光学显微镜观察 312

实验十　细胞骨架成分的荧光观察 315

实验十一　酸性磷酸酶的显示方法 319

实验十二　联会复合体的染色与观察 321

实验十三　细胞的冻存技术 323

实验十四　动物细胞培养 325

实验十五　三尖杉酯碱诱导HL-60细胞程序性死亡 330

实验十六　利用脂质体对293细胞转染重组GFP 332

实验十七　细胞融合 334

实验十八　爪蟾卵母细胞的显微注射 336

实验十九　MTA法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活率的影响 338

第七章　分子生物学实验 340

实验一　DNA琼脂糖凝胶电泳 340

实验二　质粒的提取及纯化——小量法提取（碱性裂解法） 344

实验三　PCR扩增 347

实验四　紫外吸收检测核酸的浓度与纯度 350

实验五　大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 351

实验六　限制性内切酶的酶切 354

实验七　凝胶电泳法分离、纯化DNA 357

实验八　重组载体的构建与转化 360

实验九　重组载体的鉴定 363

实验十　外源基因在大肠杆菌中的诱导表达 366

实验十一　哺乳动物组织基因组DNA的提取 368

实验十二　真核细胞总RNA的提取 371

实验十三　植物基因组DNA提取 374

实验十四　核酸探针的PCR标记 376

实验十五　Southern杂交 379

实验十六　RT-PCR 383

实验十七　荧光定量PCR技术 386

实验十八　RAPD技术 389

附录 392

附录一　实验常识 392

附录二　生物绘图的要求和方法 396

附录三　植物学基本实验技术 397

附录四　常用试剂的配制 404

附录五　分子生物学实验中的常用数据及换算关系 434

附录六　与分子生物学相关的实验资料 438

附录七　实验记录、实验报告及论文写作 444