细胞生物学与细胞工程实验教程PDF电子书下载

第一章　绪论 1

第一节　细胞生物学与细胞工程实验目的与要求 1

第二节　细胞生物学实验操作中基本实验技术 4

第三节　细胞工程实验中的基本实验技术 16

第二章　光学显微镜技术 24

实验一　普通光学显微镜的结构和使用 24

实验二　特殊显微镜的原理和应用 32

实验三　光学显微标本石蜡切片的技术 45

第三章　电子显微镜技术 52

实验四　透射电子显微镜 53

实验五　透射电子显微镜样品制备 56

实验六　扫描电子显微镜 62

实验七　扫描电子显微镜样品制备 65

第四章　光镜下细胞及细胞器的观察 69

实验八　细胞形态结构观察与细胞大小显微测量 69

实验九　线粒体和液泡的活体染色与观察 74

实验十　质体的徒手切片观察、叶绿体的切片荧光观察 77

实验十一　细胞器的光镜切片观察 79

实验十二　动植物细胞微丝束的光学显微镜观察 85

实验十三　细胞膜的渗透性 87

实验十四　黑藻细胞内胞质环流及其对细胞松弛素B的反应 90

第五章　细胞化学 92

实验十五　核酸细胞化学 92

实验十六　糖及多糖类的细胞化学 98

实验十七　细胞中碱性蛋白质与总体蛋白质的定位 101

实验十八　脂类的细胞化学 103

实验十九　细胞中过氧化物酶类鉴定 105

实验二十　酸性磷酸酶的细胞化学 106

第六章　细胞器、生物大分子分离技术 108

实验二十一　菠菜叶片叶绿体分离与荧光观察 108

实验二十二　小麦黄化苗线粒体的分离与观察 111

实验二十三　动物细胞中细胞核与线粒体的分级分离 113

实验二十四　小麦叶片可溶性蛋白质的分离 115

实验二十五　小麦叶片蛋白质SDS-PAGE凝胶电泳 117

实验二十六　小麦基因组总DNA的提取 121

第七章　细胞分裂 124

实验二十七　蛙血涂片的无丝分裂观察 124

实验二十八　细胞有丝分裂过程的观察 125

实验二十九　细胞减数分裂压片标本制备与观察 129

第八章　染色体标本制备技术 137

实验三十　植物染色体标本制备技术 137

实验三十一　简易骨髓法快速制备动物染色体标本 143

第九章　原位杂交技术 147

实验三十二　植物染色体荧光原位杂交技术 151

第十章　细胞凋亡 155

实验三十三　细胞凋亡形态学检测方法 162

第十一章　动物细胞培养与观察 165

实验三十四　细胞培养的准备工作 166

实验三十五　动物细胞的原代培养 178

实验三十六　培养细胞计数及活力测定 183

实验三十七　动物细胞的传代培养 187

实验三十八　鸡红细胞的低温冷冻保存与复苏 190

实验三十九　植物组织培养 195

第十二章　植物组织培养 195

实验四十　植物细胞的悬浮培养 200

实验四十一　植物原生质体的分离与培养 204

第十三章　细胞融合技术 208

第一节　细胞融合的概念与意义 208

第二节　细胞融合技术的建立与发展 209

实验四十二　鸡血细胞的体外融合 210

实验四十三　聚乙二醇方法诱导植物原生质体融合 214

实验四十四　细胞电融合方法 216

实验四十五　淋巴细胞杂交瘤技术 220

第十四章　转基因动物技术 230

第一节　转基因动物的原理和方法 231

第二节　基因显微注射法所需仪器试剂 234

第三节　实验动物的规格和准备 237

第四节　显微注射操作方法 239

第五节　转基因动物的检测方法 245

参考文献 254