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第一篇 普通生物学实验技术 3

第一章 普通生物学实验的基本知识 3

一、普通生物学实验的性质与目的 3

二、常用实验用品的准备 3

三、实验守则 4

四、绘制生物图的要点 4

五、动物解剖规范及解剖术语 5

第二章 普通生物学实验内容与操作 7

实验一 生物显微镜的结构和使用方法 7

实验二 动植物细胞的观察 11

实验三 植物组织的观察 14

实验四 植物根的形态结构观察 17

实验五 植物茎和叶的形态结构观察 19

实验六 原生动物门（Protozoa）动物的观察 23

实验七 腔肠动物门（Coelenterata）、多孔动物门（Spongia）动物的观察 27

实验八 扁形动物门（Platyhelminthes）、线形动物门（Nematoda），附轮形动物门（Rotifera）动物的观察 31

实验九 环毛蚓（Pheretima）的外形观察与解剖 35

实验十 节肢动物门——白滨对虾（Litopenaeus.sp）的外形观察及解剖 40

实验十一 蝗虫（Locusta）的外形及其内部结构观察 45

实验十二 鲫鱼（Carassius auratus）［鲤鱼（Cyprinus carp）］的外形及其内部结构观察 49

实验十三 青蛙（Rana nigromaculata）［或蟾蜍（Bufo）］的外形及其内部结构观察 54

实验十四 鸡（Gallus）［或鸽（Columba livia domestica）］的外形及其内部解剖观察 62

实验十五 家兔（Coniglio）的形态结构观察 68

第二篇 环境生物学实验技术 77

第三章 环境生物学实验基本知识 77

一、环境生物学实验课的目的与基本要求 77

二、环境生物学实验技术要求 78

第四章 环境生物学实验内容与操作 89

实验一 蚕豆根尖微核实验 89

实验二 种子发芽及根伸长毒性实验 91

实验三 小麦叶片叶绿素a的测定 93

实验四 蚯蚓急性与亚急性毒性试验 95

实验五 有机污染物对土壤脱氢酶活性的影响 98

实验六 草虾回避实验 100

实验七 草履虫的急性毒性试验 102

实验八 污染物对鱼体内超氧化物歧化酶的影响 105

实验九 水中病原菌的检验与治疗药物的筛选 107

实验十 初级生产力的14C测定法——湖泊富营养化的监测方法 109

实验十一 淡水藻类的分类与观察 112

实验十二 底栖动物的采集与观察 115

实验十三 污染物对植物气孔影响的比较观察 117

实验十四 植物叶片SO2生物残毒的测定 119

实验十五 五日生物化学需氧量（BOD5）的测定 122

实验十六 典型溴化阻燃剂在植物体内的积累和分布 125

第三篇 环境微生物学实验技术 131

第五章 环境微生物学实验的基本知识 131

一、环境微生物学实验课的性质与目的 131

二、环境微生物实验常用设备简介及使用方法 131

三、环境微生物学实验室安全规程 134

第六章 环境微生物学实验内容与操作 136

实验一 微生物形态观察 136

实验二 培养基的配制与灭菌 137

实验三 公共场所空气中细菌总数检测方法 140

实验四 细菌的革兰氏染色法 141

实验五 土壤中微生物的纯种分离与培养 143

实验六 水中细菌总数的测定 144

实验七 水中大肠菌群的测定 147

实验八 目标菌生长曲线的测定 150

实验九 活性污泥样品采集及生物活性的检测 152

实验十 活性污泥性能测定 153

实验十一 显微镜油浸系物镜的使用 154

实验十二 细菌单染色法及口腔环境中微生物的观察 156

实验十三 细菌鞭毛染色及其运动的观察 157

实验十四 细菌芽孢、荚膜的染色及观察 159

实验十五 细菌大小的测定 161

实验十六 微生物的水解实验 162

实验十七 糖发酵试验 164

实验十八 微生物与氧关系的检测 165

实验十九 厌氧微生物的培养 167

实验二十 凝集反应 170

实验二十一 乳酸发酵与乳酸菌饮料 171

实验二十二 酒精发酵及糯米甜酒的酿制 173

实验二十三 微生物菌种保藏 174

实验二十四 实验室环境和人体表面微生物的检查 177

实验二十五 微生物的诱变育种 180

第四篇 生态学实验技术 185

第七章 生态学实验的基本知识 185

一、生态学实验的性质与目的 185

二、生态学实验的基本要求 185

三、生态学实验报告的要求 186

四、生物统计学基础知识 186

第八章 生态学实验内容与操作 194

实验一 太阳辐射强度、降水量、蒸发量、空气温度和湿度的测定 194

实验二 土壤温度、土壤含水量和土壤养分含量的测定 198

实验三 低温环境胁迫对植物组织伤害的测定 205

实验四 盐胁迫对植物生长发育的影响 206

实验五 种群在有限环境中的Logistic增长 209

实验六 植物种群的空间分布格局 211

实验七 干旱胁迫和盐胁迫条件下植物游离脯氨酸的积累 213

实验八 植物群落的物种多样性分析 215

实验九 陆生植物群落外貌与季相的观察以及生活型的调查与分析 216

实验十 禾本科草坪植物内生真菌的检测 217

实验十一 植物群落调查和分析的基本方法 218

实验十二 辣椒根系线虫卵的观察与计数 222

实验十三 有花植物和传粉动物的互利共生 224

实验十四 果蝇低温半致死温度（LT50）的测定 225

实验十五 校园植物群落叶型的分析 226

实验十六 Holling圆盘实验 227

实验十七 动物种群的数量统计——标志重捕法 229

第五篇 生物化学实验技术 233

第九章 生物化学实验的基本知识 233

一、生物化学实验守则 233

二、生物化学实验的要求 233

三、实验记录和实验报告的要求 233

四、生物化学实验常用仪器设备简介 234

第十章 生物化学实验内容与操作 236

实验一 还原糖和总糖的测定——3，5—二硝基水杨酸比色法 236

实验二 考马氏亮蓝G-250染色法测定蛋白质含量 239

实验三 油脂酸价的测定 240

实验四 分光光度法测定蔗糖酶的米氏常数 241

实验五 维生素C的定量测定 243

实验六 蛋白质的提取及其浓度测定（紫外吸收法） 245

实验七 血清脂蛋白琼脂糖电泳 247

实验八 氨基酸的分离鉴定——纸层析法 248

实验九 血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳 250

实验十 氨基转移作用 252

实验十一 基因组DNA的快速提取——碘化钾法 254

实验十二 琼脂糖凝胶电泳技术——DNA样品检测 255

参考文献 257