第一章 植物学实验 1
实验一 植物细胞内贮藏物质的观察和鉴定 1
实验二 细胞壁的观察及成分鉴定 3
实验三 植物的成熟组织 6
实验四 茎的形态与结构 12
实验五 叶的形态与结构 18
实验六 花的形态与结构 23
实验七 胚的发育与种子的形成 26
实验八 植物界的基本类群 29
实验九 被子植物分类主要形态学基础知识 32
实验十 植物分类（一）藻类、菌类植物 37
实验十一 植物分类（二）地衣、苔藓植物 38
实验十二 植物分类（三）蕨类植物 39
实验十三 植物分类（四）裸子植物——松科 40
实验十四 植物分类（五）马兜铃科、蓼科、毛茛科、木兰科 41
实验十五 植物分类（六）蔷薇科、豆科、十字花科、樟科 43
实验十六 植物分类（七）五加科、伞形科、马鞭草科、唇形科 45
实验十七 植物分类（八）玄参科、桔梗科、葫芦科、菊科 47
实验十八 植物分类（九）百合科、鸢尾科、兰科 49
第二章 生物化学实验 50
实验一 紫外吸收法测定蛋白质含量 50
实验二 双缩脲法（Biuret法）测定蛋白质含量 53
实验三 Folin-酚试剂法（Lowry法）测定蛋白质含量 55
实验四 考马斯亮蓝染色法（Bradford法）测定蛋白质含量 57
实验五 2,4-二硝基苯肼法测定总维生素C含量 59
实验六 茚三酮显色法测定总氨基酸含量 61
实验七 序列超速离心分离血浆脂蛋白 63
实验八 血清脂类硅胶G薄层层析 66
实验九 凝胶层析法纯化低密度脂蛋白（LDL） 69
实验十 血清γ-球蛋白的分离纯化 74
实验十一 亲和层析法分离纯化载脂蛋白E 77
实验十二 血清脂蛋白琼脂糖凝胶电泳 80
实验十三 血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳定量测定 82
实验十四 SDS-PAGE凝胶电泳法测定蛋白质的相对分子量 85
实验十五 等电聚焦电泳法测定蛋白质的等电点 93
实验十六 大鼠肝脏蛋白质的双向电泳分析 98
实验十七 酶作用的高度专一性 102
实验十八 酶活力的影响因素 105
实验十九 血清碱性磷酸酶米氏常数和酶活性的测定 109
实验二十 琼脂糖电泳法测定乳酸脱氢酶同工酶 113
实验二十一 赖氏法测定血清丙氨酸氨基转移酶 116
实验二十二 血糖影响因素与血糖测定 119
实验二十三 血清总胆固醇测定 121
实验二十四 血浆载脂蛋白A-I(apoA-I)的分离纯化 123
实验二十五 血浆载脂蛋白B-100(apoB-100)的分离纯化 129
第三章 微生物学实验 131
实验一 培养基的配制 131
实验二 消毒与灭菌 136
实验三 微生物的分离培养 143
实验四 显微镜的使用 149
实验五 标本制备及染色 158
实验六 细菌培养特征的观察 163
实验七 放线菌、霉菌、酵母的形态观察 166
实验八 从自然环境中分离噬菌体 170
实验九 病毒、噬菌体 172
实验十 担子菌的弹射分离法 176
实验十一 微生物在自然界的分布 178
实验十二 微生物数量的测定 182
实验十三 微生物的生理生化反应 188
实验十四 环境因素对微生物生长发育的影响 195
实验十五 微生物遗传与变异 199
实验十六 酵母细胞的固定化技术 204
实验十七 微生物菌种保藏 206
第四章 免疫学实验 211
实验一 可溶性蛋白多克隆抗体的制备 211
实验二 直接凝集试验——ABO血型鉴定 214
实验三 单向免疫扩散试验 216
实验四 双向免疫扩散试验 218
实验五 对流免疫电泳 220
实验六 免疫浊度测定——IgG、IgM、IgA透射比浊测定 222
实验七 补体溶血试验 224
实验八 酶标记免疫技术——ELISA检测乙肝表面抗原 226
实验九 放射免疫技术 230
实验十 斑点免疫层析技术——“一步金法”早早孕检测 232
实验十一 外周血淋巴细胞分离法 234
实验十二 E玫瑰花环试验 236
实验十三 酶免疫组化技术——T细胞表面CD3分子的检测 238
实验十四 淋巴细胞转化试验 240
实验十五 抗体生成细胞检测——溶血空斑试验 243
实验十六 小白鼠巨噬细胞功能测定 246
实验十七 流式细胞检测技术——人外周血Th1/Th2细胞亚群检测 248
实验十八 酶免疫印迹技术 253
实验十九 单克隆抗体制备技术 256
第五章 遗传学实验 260
实验一 有丝分裂 260
实验二 减数分裂 263
实验三 果蝇主要性状观察和雌雄的鉴别 266
实验四 果蝇培养 268
实验五 果蝇单因子试验 270
实验六 果蝇二对因子杂交试验 272
实验七 果蝇的伴性遗传 274
实验八 果蝇的三点测交试验 276
实验九 果蝇唾腺染色体的制作与观察 279
实验十 粗糙链孢霉的分离和交换 281
实验十一 植物多倍体的诱发和观察 284
实验十二 植物有性杂交 285
实验十三 人体外周血淋巴细胞培养及染色体标本制备 287
实验十四 小鼠骨髓细胞染色体的标本制备 290
实验十五 贴壁培养细胞的染色体标本制备 292
实验十六 正常人非显带染色体的核型分析 294
实验十七 X染色质的标本制备 297
实验十八 微核检测技术 299
第六章 细胞生物学实验 301
实验一 细胞的形态结构 301
实验二 细胞运动 302
实验三 胞质环流 303
实验四 细胞吞噬 304
实验五 细胞凝聚反应 305
实验六 死活细胞鉴别 306
实验七 细胞膜的渗透性 308
实验八 大鼠肝线粒体的分离 310
实验九 动物细胞微丝束的光学显微镜观察 312
实验十 细胞骨架成分的荧光观察 315
实验十一 酸性磷酸酶的显示方法 319
实验十二 联会复合体的染色与观察 321
实验十三 细胞的冻存技术 323
实验十四 动物细胞培养 325
实验十五 三尖杉酯碱诱导HL-60细胞程序性死亡 330
实验十六 利用脂质体对293细胞转染重组GFP 332
实验十七 细胞融合 334
实验十八 爪蟾卵母细胞的显微注射 336
实验十九 MTA法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活率的影响 338
第七章 分子生物学实验 340
实验一 DNA琼脂糖凝胶电泳 340
实验二 质粒的提取及纯化——小量法提取（碱性裂解法） 344
实验三 PCR扩增 347
实验四 紫外吸收检测核酸的浓度与纯度 350
实验五 大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 351
实验六 限制性内切酶的酶切 354
实验七 凝胶电泳法分离、纯化DNA 357
实验八 重组载体的构建与转化 360
实验九 重组载体的鉴定 363
实验十 外源基因在大肠杆菌中的诱导表达 366
实验十一 哺乳动物组织基因组DNA的提取 368
实验十二 真核细胞总RNA的提取 371
实验十三 植物基因组DNA提取 374
实验十四 核酸探针的PCR标记 376
实验十五 Southern杂交 379
实验十六 RT-PCR 383
实验十七 荧光定量PCR技术 386
实验十八 RAPD技术 389
附录 392
附录一 实验常识 392
附录二 生物绘图的要求和方法 396
附录三 植物学基本实验技术 397
附录四 常用试剂的配制 404
附录五 分子生物学实验中的常用数据及换算关系 434
附录六 与分子生物学相关的实验资料 438
附录七 实验记录、实验报告及论文写作 444