第一章 绪论 1
第一节 细胞生物学与细胞工程实验目的与要求 1
第二节 细胞生物学实验操作中基本实验技术 4
第三节 细胞工程实验中的基本实验技术 16
第二章 光学显微镜技术 24
实验一 普通光学显微镜的结构和使用 24
实验二 特殊显微镜的原理和应用 32
实验三 光学显微标本石蜡切片的技术 45
第三章 电子显微镜技术 52
实验四 透射电子显微镜 53
实验五 透射电子显微镜样品制备 56
实验六 扫描电子显微镜 62
实验七 扫描电子显微镜样品制备 65
第四章 光镜下细胞及细胞器的观察 69
实验八 细胞形态结构观察与细胞大小显微测量 69
实验九 线粒体和液泡的活体染色与观察 74
实验十 质体的徒手切片观察、叶绿体的切片荧光观察 77
实验十一 细胞器的光镜切片观察 79
实验十二 动植物细胞微丝束的光学显微镜观察 85
实验十三 细胞膜的渗透性 87
实验十四 黑藻细胞内胞质环流及其对细胞松弛素B的反应 90
第五章 细胞化学 92
实验十五 核酸细胞化学 92
实验十六 糖及多糖类的细胞化学 98
实验十七 细胞中碱性蛋白质与总体蛋白质的定位 101
实验十八 脂类的细胞化学 103
实验十九 细胞中过氧化物酶类鉴定 105
实验二十 酸性磷酸酶的细胞化学 106
第六章 细胞器、生物大分子分离技术 108
实验二十一 菠菜叶片叶绿体分离与荧光观察 108
实验二十二 小麦黄化苗线粒体的分离与观察 111
实验二十三 动物细胞中细胞核与线粒体的分级分离 113
实验二十四 小麦叶片可溶性蛋白质的分离 115
实验二十五 小麦叶片蛋白质SDS-PAGE凝胶电泳 117
实验二十六 小麦基因组总DNA的提取 121
第七章 细胞分裂 124
实验二十七 蛙血涂片的无丝分裂观察 124
实验二十八 细胞有丝分裂过程的观察 125
实验二十九 细胞减数分裂压片标本制备与观察 129
第八章 染色体标本制备技术 137
实验三十 植物染色体标本制备技术 137
实验三十一 简易骨髓法快速制备动物染色体标本 143
第九章 原位杂交技术 147
实验三十二 植物染色体荧光原位杂交技术 151
第十章 细胞凋亡 155
实验三十三 细胞凋亡形态学检测方法 162
第十一章 动物细胞培养与观察 165
实验三十四 细胞培养的准备工作 166
实验三十五 动物细胞的原代培养 178
实验三十六 培养细胞计数及活力测定 183
实验三十七 动物细胞的传代培养 187
实验三十八 鸡红细胞的低温冷冻保存与复苏 190
实验三十九 植物组织培养 195
第十二章 植物组织培养 195
实验四十 植物细胞的悬浮培养 200
实验四十一 植物原生质体的分离与培养 204
第十三章 细胞融合技术 208
第一节 细胞融合的概念与意义 208
第二节 细胞融合技术的建立与发展 209
实验四十二 鸡血细胞的体外融合 210
实验四十三 聚乙二醇方法诱导植物原生质体融合 214
实验四十四 细胞电融合方法 216
实验四十五 淋巴细胞杂交瘤技术 220
第十四章 转基因动物技术 230
第一节 转基因动物的原理和方法 231
第二节 基因显微注射法所需仪器试剂 234
第三节 实验动物的规格和准备 237
第四节 显微注射操作方法 239
第五节 转基因动物的检测方法 245
参考文献 254