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实验一 普通光学显微镜及其使用 1

实验二 特殊显微镜及其使用 11

Ⅰ．暗视场显微镜 11

Ⅱ．相差显微镜 15

Ⅲ．荧光显微镜 21

实验三 显微摄影术 26

实验四 电子显微镜的演示 49

实验五 细胞凝集反应 53

实验六 细胞膜的渗透性 54

实验七 巨噬细胞吞噬现象的观察 56

实验八 线粒体和液泡系的超活染色与观察 58

实验九 叶绿体的分离与荧光观察 61

实验十 线粒体的分离与观察 63

Ⅰ．大鼠肝线粒体的分离 64

Ⅱ．玉米线粒体的分离 65

实验十一 动物细胞微丝束的光学显微镜观察 66

实验十二 微管和中等纤维的免疫荧光观察 69

Ⅰ．动物细胞微管的观察 69

Ⅱ．动物细胞中等纤维的观察 71

Ⅲ．植物细胞微管的观察 73

实验十三 DNA的Feulgen染色法 75

实验十四 酸性磷酸酶的显示方法 77

实验十五 动物染色体标本的制备与观察 79

Ⅰ．小白鼠骨髓细胞染色体的制备方法 80

Ⅱ．黑斑蛙或蟾蜍骨髓细胞染色体标本的制备 81

实验十六 植物染色体标本的制备与观察 82

实验十七 染色体核仁组成区的银染色法 83

实验十八 减数分裂压片标本制备与观察 85

实验十九 联会复合体的染色与观察 87

实验二十 动物细胞培养 89

Ⅰ．原代细胞培养 89

Ⅱ．传代细胞培养与观察 92

实验二十一 植物组织培养 97

实验二十二 植物原生质体的分离和培养 101

实验二十三 细胞电融合方法 105

实验二十四 显微放射自显影技术 111

实验二十五 细胞电泳 116

实验二十六 类坏死的处理及死、活细胞鉴别 122

实验二十七 透射电镜样品的制备与观察 124

Ⅰ．组织的固定和包埋 124

Ⅱ．支持膜的制作 126

Ⅲ．玻璃刀的制作 127

Ⅴ．切片 130

Ⅳ．包埋块的修正 130

Ⅵ．切片的染色 131

Ⅶ．透射电镜样品的观察 132

实验二十八 扫描电镜样品的制备与观察 133

实验二十九 电镜酶化学技术 141

Ⅰ．三磷酸腺苷酶 141

Ⅱ．酸性磷酸酶 142

实验三十 细胞器的分离 143

实验三十一 膜蛋白质的分离 149

实验三十二 脂质体的制备 156

实验三十三 荧光标记技术 158

实验三十四 免疫胶体金技术 161

实验三十五 MAT法检测化学药物对体外培养细胞增殖及存活的影响 164

实验三十六 腹腔巨噬细胞吞噬功能检测方法 166

实验三十七 改良的空斑形成细胞测定法 168

实验三十八 T淋巴细胞玫瑰花结实验 171

实验三十九 3H标记化合物研究细胞内DNA和RNA的合成 173

实验四十 3H标记膜片法测定细胞S期的DNA复制 185

实验四十一 用3H标记化合物研究细胞内DNA、RNA和蛋白质代谢的动态过程 186

实验四十二 用32p-磷酸氢二钠研究细胞内ATP代谢的动态过程 189

实验四十三 放射免疫测定法 191

Ⅰ．微量全血培养 195

实验四十四 人体染色体组型分析与分带技术 195

Ⅱ．人淋巴细胞染色体标本的制作 196

Ⅲ．人类体细胞染色体组型分析 199

Ⅳ．人类染色体G带显示法 201

实验四十五 人体姊妹染色单体区分染色法 203

实验四十六 植物染色体组型分析与分带技术 205

Ⅰ．植物染色体标本制备的去壁低渗法 205

Ⅱ．植物染色体组型分析方法 208

Ⅲ．植物染色体GiemsaC-带技术 211

Ⅳ．植物染色体GiemsaN-带技术 213

Ⅴ．植物染色体GiemsaG-带技术 214

实验四十七 杂交瘤技术 216

实验四十八 哺乳类细胞中早熟染色体凝集的诱导和观察 223

实验四十九 哺乳动物早期胚胎细胞的活体观察及体外培养技术 226

实验五十 植物细胞的悬浮培养 235

实验五十一 植物原生质体融合与体细胞杂交 237

Ⅰ．聚乙二醇法诱导原生质体融合 237

Ⅱ．供体-受体原生质体融合与胞质杂种的形成 239

实验五十二 质粒DNA的快速提取 241

实验五十三 用根癌农杆菌介导植物细胞的遗传转化 245

实验五十四 植物细胞免疫荧光原位杂交 248