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医学细胞分子生物学实验  第2版
医学细胞分子生物学实验  第2版

医学细胞分子生物学实验 第2版PDF电子书下载

医药卫生

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  • 作 者:苑辉卿,田克立,刘奇迹,李霞,胡晓燕
  • 出 版 社:北京:科学出版社
  • 出版年份:2013
  • ISBN:9787030381613
  • 页数:232 页
图书介绍:实验教学是医学教育的重要内容,是培养学生实践能力和创新精神的创新型人才的重要环节。在这次实验教学的改革中,我们把细胞生物学、医学生物化学与分子生物学、遗传学三个学科的实验教学融合成了一个医学细胞分子生物学实验平台,编写了这本涵盖三个学科的实验教材。本教材包括三篇,第一篇为基本实验,分为三章,第一章是细胞生物学实验,第二章是医学生物化学与分子生物实验,第三章是遗传学实验,分别从细胞形态、细胞内生物化学、分子生物学、遗传学的基本技能角度,培养学生基本的实验操作能力。此篇虽为培养基本操作技能而设计,但实验内容已进行相当程度的改进,注重先进性与实用性,紧扣目前该领域的发展趋势及临床检验的实际操作,使学生能在将来的工作中尽快适应工作需要。
《医学细胞分子生物学实验 第2版》目录

第一篇 基本实验 1

第一章 医学细胞生物学基本实验 1

第一节 细胞的显微结构 1

实验一 细胞的一般形态结构观察 1

实验二 细胞的显微测量技术 5

第二节 细胞生理活动 6

实验三 胞质环流 6

实验四 细胞吞噬 7

实验五 细胞活性鉴定 8

实验六 细胞融合 9

第三节 细胞化学成分的显示 11

实验七 普通细胞化学 12

实验八 核酸细胞化学 16

实验九 酶细胞化学 19

实验十 荧光细胞化学与免疫荧光细胞化学 22

第四节 细胞增殖 27

实验十一 无丝分裂 28

实验十二 有丝分裂 29

实验十三 减数分裂 32

实验十四 X染色质标本制备与观察 35

实验十五 早熟染色体凝集(PCC)的诱导和观察 36

第五节 细胞培养 39

实验十六 原代细胞培养 39

实验十七 细胞传代培养 42

实验十八 体外培养细胞的观察方法 45

第二章 医学生物化学基本实验 50

第一节 蛋白定量分析实验 50

实验一 双缩脲法测定蛋白质含量 50

实验二 Folin-酚法测定蛋白质含量 51

实验三 考马斯亮蓝法测定蛋白质含量 52

实验四 紫外分光光度法测定蛋白质含量 53

第二节 层析分离纯化实验 54

实验五 血清γ-球蛋白的分离纯化与鉴定 55

实验六 葡聚糖凝胶分离血红蛋白和DNP-胰糜蛋白酶混合液 57

实验七 离子交换层析分离混合氨基酸 58

第三节 电泳分析实验 59

实验八 血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳 59

实验九 血浆脂蛋白琼脂糖凝胶电泳 61

实验十 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离血清LDH同工酶 63

实验十一 SDS-PAGE测定蛋白质相对分子质量 65

实验十二 等电聚焦法测定蛋白质等电点 67

第四节 酶学实验 69

实验十三 pH对酶促反应速度的影响 69

实验十四 温度对酶促反应速度的影响 72

实验十五 底物浓度对酶促反应速度的影响——碱性磷酸酶米氏常数的测定 72

实验十六 抑制剂对酶促反应速度的影响 74

实验十七 酶的提取及比活性测定 76

第五节 物质代谢实验 80

实验十八 胰岛素对血糖含量的影响 81

实验十九 邻甲苯胺法测血糖含量 81

实验二十 糖酵解中间产物的鉴定 82

实验二十一 血清中谷丙转氨酶活性的测定 84

实验二十二 血清脂类含量分析 86

第三章 医学分子生物学基本实验 88

第一节 分子克隆实验 88

实验一 质粒DNA的提取与纯化 88

实验二 质粒DNA浓度和纯度的测定 90

实验三 DNA琼脂糖凝胶电泳 92

实验四 DNA的限制性酶切反应 93

实验五 目的DNA和载体DNA酶切片段的回收 94

实验六 目的基因与载体的体外连接 95

实验七 大肠埃希菌感受态细胞的制备 96

实验八 重组子的转化及阳性克隆的初步筛选 97

实验九 阳性重组子的鉴定 98

第二节 外源基因在原核细胞中的表达 99

实验十 外源基因在大肠埃希菌的诱导表达和提取 99

实验十一 亲和层析法纯化重组蛋白 100

第三节 PCR技术 102

实验十二 PCR扩增目的基因 102

实验十三 总RNA提取及RT-PCR扩增目的基因 103

实验十四 实时定量PCR分析真核基因的表达 107

第四节 蛋白质的表达分析 108

实验十五 蛋白质印迹实验 108

实验十六 免疫细胞化学检测细胞内蛋白表达 110

实验十七 外源基因在真核细胞中的表达 112

第四章 医学遗传学基本实验 115

第一节 细胞遗传学实验 115

实验一 人类外周血淋巴细胞培养 115

实验二 人类外周血淋巴细胞染色体的制备 116

实验三 人类染色体G显带 118

实验四 人类G显带染色体核型分析 119

实验五 姐妹染色单体交换(SCE)标本的制备与观察 121

第二节 分子遗传学实验 123

实验六 短串联重复序列(STR)的多态性分析 123

实验七 限制性片段长度多态分析 127

实验八 单链构象多态性的检测 129

第三节 人类遗传性状分析 133

实验九 遗传性状基因型与表型分析 133

实验十 遗传病的家系分析和再发风险估计 135

第二篇 综合实验 137

第一章 细胞增殖活力分析 137

第一节 细胞增殖的定量分析 137

实验一 细胞琥珀酸脱氢酶活性检测(MTT法) 137

实验二 细胞周期的检测 138

第二节 细胞内ATP含量测定 139

实验三 人淋巴细胞ATP活力检测 139

第三节 细胞增殖的染色分析 140

实验四 BrdU染色法检测细胞增殖 140

实验五 Ki-67免疫染色法检测细胞增殖 141

第二章 细胞凋亡的诱导与检测 143

第一节 细胞凋亡的诱导与形态结构观察 143

实验一 培养细胞的凋亡诱导 144

实验二 台盼蓝染色检测凋亡细胞 145

实验三 苏木精-伊红染色检测凋亡细胞 145

实验四 Giemsa染色检测凋亡细胞 146

实验五 吖啶橙荧光染色检测凋亡细胞 147

实验六 Ho.33342与PI荧光双染检测凋亡细胞 148

第二节 凋亡细胞的超微结构观察 149

实验七 透射电镜观察凋亡细胞 149

实验八 扫描电镜观察凋亡细胞 150

第三节 凋亡细胞的定量分析 151

实验九 流式细胞术检测凋亡细胞 151

第四节 细胞凋亡的分子生物学特征 153

实验十 凋亡细胞DNA ladder检测 153

实验十一 Caspase 3酶活性测定 154

实验十二 凋亡相关蛋白表达水平检测 155

实验十三 凋亡相关基因转录水平的表达检测 156

第三章 细胞的自噬与分析 159

第一节 细胞自噬的形态学分析 159

实验一 透射电镜观察自噬体的形成 160

实验二 GFP-LC3自噬斑点的荧光显微镜检测 161

第二节 自噬标志蛋白的表达分析 162

实验三 蛋白质印迹法检测自噬标志蛋白的变化 162

第四章 真核生物基因表达调控分析 164

实验一 甲基化特异性PCR检测基因启动子甲基化 164

实验二 荧光素酶报告基因瞬时转染分析启动子活性 167

第五章 四氯化碳致培养肝细胞损伤的分析 172

第一节 培养肝细胞损伤模型的诱导与形态学分析 172

实验一 肝细胞损伤的诱导及常规形态检查 172

实验二 损伤细胞的脂肪变性检测 173

第二节 肝细胞损伤的定量分析 174

实验三 CCK法检测细胞存活率 174

第三节 肝损伤细胞相关酶活性的分析 175

实验四 肝损伤细胞乳酸脱氢酶活性检测 175

实验五 肝损伤细胞谷丙转氨酶活性检测 176

第四节 肝损伤细胞相关基因的表达分析 177

实验六 肝细胞中PPAR-γ1表达水平的检测 177

第六章 人遗传性状基因的分子诊断与应用 179

实验一 Duchenne型肌营养不良的基因诊断 179

实验二 多重RT-PCR检测染色体易位 180

实验三 利用短串联重复序列进行亲权鉴定 183

第三篇 创新实验 184

实验一 糖尿病的生化及遗传检测分析实验 184

实验二 唐氏综合征的产前诊断方法 184

实验三 家族性高胆固醇血症的诊断方法 185

实验四 血友病的诊断 186

实验五 重组人促红细胞生成素在细胞中的表达、分离和纯化 187

实验六 p53基因与肿瘤相关性实验设计 187

实验七 小鼠组织细胞形态及功能分析 188

实验八 小鼠组织特种细胞的形态及特征性成分的鉴定 189

附录 190

附录一 实验室规则 190

附录二 实验室安全及防护 191

附录三 实验室常用玻璃仪器的洗涤与清洁 192

附录四 生物绘图的要求与方法 195

附录五 生物学实验设计报告 196

附录六 常用实验技术原理 197

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